Hogar Olor de la boca El sistema genitourinario de los peces. Métodos para obtener productos reproductivos de peces. Sistema reproductivo de peces.

El sistema genitourinario de los peces. Métodos para obtener productos reproductivos de peces. Sistema reproductivo de peces.

Escalas de madurez (para individuos que desova simultáneamente):

1) juvenil(juv) individuos (inmaduros), el sexo es indistinguible a simple vista. Las gónadas parecen hilos finos;

2) preparatorio: las gónadas comienzan a madurar, se distingue el sexo, la etapa en la mayoría de los peces continúa durante todo el verano;

En las mujeres, los ovarios parecen cordones transparentes por los que discurre un vaso sanguíneo. Los huevos no son visibles a simple vista.

En los machos, los testículos tienen apariencia de cordones aplanados y son de color blanquecino rosado;

3) maduración: los ovarios aumentan de volumen; los peces que desovan en primavera pueden permanecer en esta etapa desde la segunda mitad del verano hasta la primavera del año siguiente.

En las hembras, los huevos son claramente visibles a simple vista, tienen una forma multifacética y son difíciles de separar cuando se raspan. Su transparencia disminuye y hacia el final de la etapa se vuelven opacos.

En los hombres, los testículos tienen una parte anterior más ensanchada y se estrechan en la parte posterior. En sección transversal sus bordes no se derriten;

4) madurez: los genitales alcanzan casi el máximo desarrollo (etapa corta)

En las mujeres, los ovarios suelen ocupar 2/3 de la cavidad abdominal. Los huevos son grandes, transparentes, se separan fácilmente entre sí y salen al presionarlos.

Los machos tienen testículos. blanco y se llenan de leche líquida; cuando se corta el testículo transversalmente, sus bordes quedan redondeados. Al presionar el abdomen se liberan gotas de esperma, a menudo con sangre;

5) desove(líquido)

En las hembras, cuando se aplica una ligera presión en el abdomen, se liberan los huevos.

En los machos, una ligera presión sobre el abdomen libera espermatozoides;

6)knockear: los productos reproductivos son completamente eliminados (etapa corta)

En las mujeres, los ovarios están flácidos, inflamados y de color rojo oscuro. A menudo queda una pequeña cantidad de huevos.

En los machos, los testículos están flácidos, inflamados y de color rojo oscuro;

6-2) Etapa de recuperación- Las gónadas se restauran después del desove y adquieren una forma elástica, pero las zonas de los ovarios y los testículos cercanas a la abertura urogenital permanecen inflamadas.

Ventajas:

Utilizado en condiciones de campo en PBA.

Permite una identificación clara de la dinámica intraespecífica.

Defectos:

Subjetividad

Indicadores cuantitativos:

El coeficiente de madurez es la relación entre la masa de las gónadas y la masa corporal del pez,%

El índice de madurez es el porcentaje de CV de la gónada, calc. en ciertos períodos de madurez de las gónadas hasta max KZ.

54. Fertilidad de los peces: conceptos básicos y métodos para su detección.

La fecundidad varía con la edad y las condiciones ambientales.

Fecundidad absoluta (individual): la cantidad de huevos que una hembra puede desovar en 1 temporada de desove.

Al aumentar el peso y el tamaño corporal, aumenta la fertilidad.

La fertilidad individual relativa es el número de huevos por unidad de masa de la hembra.

La fertilidad laboral es la cantidad de huevos extraídos con fines de reproducción de 1 hembra.

La fertilidad de la especie es la cantidad de huevos que pone una hembra durante toda su vida.

La fecundidad de la población es la cantidad de huevos que desova una población en 1 temporada de desove.

Método para determinar la fertilidad.

Tomado en la etapa 4 de madurez.

Se toma por peso o método volumétrico.

Determinar la fertilidad por porciones.

Analiza los huevos y selecciona porciones.

55. Características de la determinación de las etapas de madurez y fertilidad en especies de peces que desovan en porciones. La fecundidad es la cantidad de huevos que una hembra puede desovar en una temporada de desove. En los peces que desovan en porciones, la fecundidad se determina por el número de porciones; si un pez desova 2-3 porciones, se puede determinar mediante un método visual; si >3 porciones, se deben realizar estudios histológicos. Métodos de grado de madurez de las gónadas: 1) histológico (se realizan cortes y se determina el grado de madurez del ovocito y espermatozoide), 2) escala de madurez (juvenil, preparatoria, maduración, madurez, desove, eclosión), 3) indicadores cuantitativos de Masa gonadal y peso corporal del pez. Para el ovario de peces con períodos de desove, es típico: ovocitos no desarrollados u ovocitos en diferentes fases de madurez. Cada porción puede preceder a la otra entre 2 y 3 semanas. El tamaño de la porción se juzga midiendo el diámetro de los huevos en el ovario durante los períodos previo al desove y de desove.

Para la implementación exitosa de actividades de cultivo y recuperación de peces, se requiere un conocimiento profundo ciclo vital especies valiosas de peces y el vínculo más importante: reproducción.

Concepto cría de peces Incluye: desarrollo de las gónadas, desove, fecundación, desarrollo embrionario y postembrionario. La reproducción sólo es posible cuando el pez alcanza la madurez sexual, es decir, Maduración de sus productos reproductivos (en hembras, óvulos, en machos, espermatozoides).

La madurez sexual en ciertas especies de peces ocurre en a diferentes edades. La mayoría de las carpas, percas. Salmón Alcanza la madurez sexual entre los 6 y 12 años. En algunas especies de peces, el período de desarrollo de las células germinales se retrasa más de largo tiempo. Así, el esturión alcanza la madurez sexual entre los 6 y los 12 años (beluga, entre los 10 y 16 años). La madurez sexual en los machos ocurre entre 1 y 2 años antes que en las hembras.

Los factores ambientales (principalmente la temperatura y las condiciones nutricionales) tienen una gran influencia en el proceso de maduración de los productos reproductivos del pescado. Las bajas temperaturas, así como una nutrición insuficiente, pueden frenar la maduración de las gónadas. La maduración normal de las células germinales (oogénesis en las hembras y espermatogénesis en los machos) se produce sólo en condiciones ambientales favorables. Cada célula germinal, antes de madurar finalmente, debe pasar por una serie de etapas en su desarrollo. En este caso se distinguen dos procesos: 1 – el período de alcanzar la madurez sexual, que comienza con la aparición de células germinales primarias y termina con la formación de productos reproductivos maduros; 2 – Maduración periódica de una determinada parte de los productos reproductivos durante el período entre desoves (después de alcanzar la madurez sexual).. El primer período es más largo, el segundo dura tiempos diferentes para las distintas especies de peces. Por lo tanto, la carpa y la dorada se reproducen anualmente, pero el esturión muere después de 3 a 5 años y el salmón del Pacífico muere después del desove.

El estado de madurez de las gónadas se puede determinar mediante escalas de madurez. Para carpas y percas existen escamas S.I. Kulaev y V.A. Meyen, para esturión - A.Ya. Nedoshivina, A.V. Lukin y I.N. Molchanova. DE. Sakun y N.A. Butskaya desarrolló dos escalas universales para todos los grupos comerciales de peces. A partir de estas dos escalas se ha desarrollado una única escala universal de madurez de las gónadas de hembras y machos.

Desarrollo de células germinales femeninas (oogénesis) consta de las siguientes etapas:

Etapa I: individuos jóvenes inmaduros. Las gónadas parecen cordones gruesos y transparentes adyacentes a las paredes de la cavidad corporal. Las células reproductivas de las mujeres están representadas. oogonia, o ovocitos jóvenes durante el período de crecimiento protoplásmico.

Etapa II: individuos en maduración o individuos con productos reproductivos en desarrollo después del desove. Los ovarios son translúcidos. A lo largo de ellos discurre una gran vaso sanguíneo. Cuando se miran a través de una lupa, los ovarios son claramente visibles. ovocitos período de crecimiento protoplásmico. Los ovocitos individuales ya han completado su crecimiento y pueden distinguirse a simple vista. Alrededor de los ovocitos se forma una capa de células foliculares formadas a partir del epitelio germinal de los ovarios.

Etapa III: las gónadas están lejos de la madurez, pero ya están relativamente bien desarrolladas. Los ovarios ocupan de un tercio a la mitad del volumen de la cavidad abdominal y contienen pequeños ovocitos opacos, visibles a simple vista, generalmente diferentes tonos color amarillo. Cuando un ovario se rompe, se forman varios bultos. En esta etapa, el crecimiento de los ovocitos se produce no solo debido al protoplasma, sino también como resultado de la acumulación de nutrientes en el plasma, representados por gránulos de yema y gotitas de grasa. Este período se llama período de crecimiento trófico(grande) .

Dependiendo del pigmento específico de las diferentes especies de peces, los ovarios adquieren un tono diferente. En el citoplasma de los ovocitos aparecen vacuolas que contienen sustancias de naturaleza carbohidrato. Se forma la membrana del ovocito. Primero, se forman microvellosidades en la superficie del ovocito. En la base de las microvellosidades se forma una fina capa de material homogéneo y sin estructura. Con la acumulación de inclusiones de yema en el ovocito, se forma otra capa, que consta de haces de elementos estructurales tubulares. Luego, la capa interna se transforma en una capa externa homogénea y ambas capas forman una sola capa. Dependiendo de la biología de la especie y la ecología del desove, la adaptabilidad durante la filogénesis y otras condiciones, el caparazón de diferentes especies de peces tiene una estructura diferente. Entonces, en los esturiones consta de varias capas (caparazón complejo), en algunas especies es una sola capa.

Al examinar la membrana del ovocito bajo un microscopio, se ven estrías radiales, de ahí el nombre de zona radiata.

Un ovocito con una zona radiada formada está rodeado de células foliculares, que forman la membrana folicular o folículo. En algunas especies de peces, se forma otra concha (gelatina) encima de la zona radiata, por ejemplo, en la cucaracha. Algunas especies de peces tienen un caparazón velloso.

Etapa IV: las gónadas han alcanzado o casi alcanzado su pleno desarrollo. Los ovocitos son grandes y se separan fácilmente entre sí. El color de los ovarios varía entre las diferentes especies de peces. Suele ser amarillo, naranja, en el esturión es gris o negro. Las células germinales están representadas por ovocitos que han completado el crecimiento trofoplasmático y han formado membranas y micropilos. En la etapa 4, así como en las etapas 2 y 3 de madurez en los peces policíclicos, los ovarios contienen oogonias y ovocitos del período de crecimiento protoplásmico, que forman una reserva para futuros desoves.

La cáscara del óvulo contiene un micrópilo para que los espermatozoides penetren en el óvulo. Los esturiones tienen varios de ellos (esta es una adaptación de la especie). El núcleo del ovocito se mueve hacia el micropilo. La semilla y la yema se encuentran polares. El núcleo está en el polo animal, la yema en el polo vegetativo. La yema se fusiona con la grasa.

Etapa V: individuos fluidos. Los huevos fluyen libremente desde la abertura genital. Al pasar a la etapa V, los huevos se vuelven transparentes. Cuando el folículo se rompe, el óvulo ingresa posteriormente al oviducto o a la cavidad abdominal, dependiendo de la estructura del ovario. Después de la ovulación, se produce un rápido proceso de maduración: la meiosis.

En los esturiones, los núcleos del núcleo se disuelven y el núcleo disminuye de tamaño. La capa del núcleo se disuelve y comienzan las divisiones. Después de esto, los ovocitos de pescado se liberan de la membrana folicular.

Etapa VI: individuos engendrados. Los productos reproductivos han sido eliminados. Los ovarios son pequeños, flácidos. Los folículos restantes, así como los óvulos no desovados, sufren reabsorción. Una vez que los folículos vacíos se reabsorben, los ovarios entran en la etapa II y, en algunos casos, en la etapa III de madurez.

La escala considerada de etapas de madurez de las gónadas se puede utilizar en el análisis de peces con desove único, en el que las hembras desovan solo una vez al año. Sin embargo, en algunas especies de peces el desove se divide en porciones (muchas carpas, arenques y percas). Las hembras de estos peces desovan varias veces al año y sus ovocitos maduran en diferentes momentos.

Proceso Desarrollo de células germinales masculinas (espermatogénesis).) incluye varias etapas:

Etapa I. Se presentan células reproductoras masculinas. espermatogonias. Las espermatogonias son células germinales primarias que se forman en los peces macho a partir del epitelio peritoneal.

Etapa II. Los testículos parecen cordones planos de color grisáceo o blanco rosado. Las células sexuales están representadas por espermatogonias en estado de reproducción. Se dividen varias veces, aumentando en número, de cada uno inicial se forman cinco (tales grupos se llaman quistes).

Etapa III. Los testículos en esta etapa aumentan significativamente de volumen, son densos y elásticos. Las espermatogonias entran en un período de crecimiento y se convierten en espermatocitos Ordeno. Luego comienzan a dividirse y de cada espermatocito de primer orden se obtienen dos de segundo orden, y luego 4 espermátidas tamaño más pequeño. Las espermátidas resultantes entran en un período de formación y gradualmente se convierten en espermatozoides maduros.

Etapa IV. Los testículos en esta etapa son de mayor tamaño y de color blanco lechoso. En esta etapa se completa la espermatogénesis y los túbulos seminíferos contienen espermatozoides.

Etapa V. Se forma líquido seminal, lo que provoca la licuefacción de la masa de espermatozoides y provoca su fuga.

VI etapa. Individuos engendrados. Los testículos son pequeños y flácidos. Los espermatozoides restantes quedan expuestos. fagocitosis.

Recibo productores maduros, en el que los óvulos y el esperma son aptos para la fecundación, es el elemento más importante del trabajo sobre la cría artificial de esturiones.

Anteriormente, obtener este tipo de peces sólo era posible cerca de los lugares naturales de desove o directamente en las zonas de desove, donde era necesario organizar una pesca especial. Del pescado capturado, sólo una pequeña parte (no más del 1-4%) tenía caviar maduro y esperma.

Con un método tan poco fiable para obtener productos maduros, organizar la cría artificial a gran escala se volvió extremadamente difícil.

Métodos ecológicos y fisiológicos para estimular la maduración de los productos reproductivos.

Para transferir la cría de esturiones a una base planificada, era necesario dominar el proceso de transferencia de los productores al estado de desove para obtener óvulos maduros y el mismo esperma.

Hay dos formas de resolver este problema. Uno de ellos, el medioambiental, fue elaborado por el académico de la Academia de Ciencias de la República Socialista Soviética de AzSSR, A. N. Derzhavin. Creía que al criar toros se deben crear condiciones ambientales que correspondan a las naturales en las que se produce el desarrollo de los productos reproductivos. Dado que en la naturaleza los óvulos y el esperma maduran durante el desove del pez en contra de la corriente de agua, A. N. Derzhavin consideró que este factor era el principal que influye en la aceleración de la maduración de los productos reproductivos. Recomendó utilizar jaulas ovaladas de 25 m de largo, 6 m de ancho y hasta 1,2 m de profundidad para mantener y obtener desovadores maduros, en las cuales se creaba una corriente y se simulaban las condiciones del río (corrientes rápidas, etc.). Se colocan guijarros en el fondo de dichas jaulas. El suministro de agua en la jaula es mecánico, el caudal de agua es de 20 l/s. Para mejorar la circulación del agua se instala en el centro de la jaula un muro de hormigón de 19 m de largo, en cada jaula se colocan 50 peces; hembras y machos por separado. Junto con la corriente, se crean condiciones favorables de temperatura y oxígeno en las jaulas. Sin embargo, la experiencia con este tipo de jaulas ha demostrado que sólo un tercio de los desovadores maduran en ellas y también es difícil determinar el momento en que se debe tomar el caviar.

El método fisiológico para estimular la maduración de los productos reproductivos, desarrollado por el profesor N.L. Gerbilsky, no presenta estos inconvenientes. Se basa en la introducción de un preparado acetonado de la hipófisis en los músculos del cuerpo de la mujer y del hombre de los que se quiere obtener óvulos maduros o esperma.

Los estudios han demostrado que en el cuerpo de los peces un importante regulador de la maduración de las células germinales es el apéndice cerebral: la glándula pituitaria, que conecta el sistema nervioso del cuerpo con las gónadas. La glándula pituitaria, una glándula endocrina, produce sustancias especiales: hormonas, bajo cuya influencia los productores pasan a un estado de desove.

La glándula pituitaria consta de dos partes: la cerebral - neurohipófisis y la glandular - adenohipófisis. Las hormonas gonadotrópicas son producidas por las células glandulares de la adenohipófisis.

Los mejores resultados se obtienen combinando métodos ecológicos y fisiológicos para estimular la función sexual de los productores de esturión. La combinación se lleva a cabo en la siguiente secuencia: primero, los reproductores se mantienen en depósitos especiales y luego se realiza una inyección pituitaria.

Granjas de jigging para retener a los productores

Los productores se mantienen en depósitos especiales destinados a la pesca con jigging. Hay dos tipos principales de granjas de jigging. Uno de ellos fue diseñado por el prof. B. N. Kazansky, el segundo, por piscicultores de Kura (cría en jaulas tipo Kurin).

Beregovoe granja de jigging diseños de B. N. Kazansky. La granja de jaulas diseñada por B. N. Kazansky tiene estanques de tierra como reserva a largo plazo y cerca de ellos se encuentran piscinas de hormigón para jaulas, destinadas al mantenimiento a corto plazo de los reproductores.

Las hembras y los machos se mantienen separados.

El estanque de tierra consta de dos partes: la principal, expandida, con una profundidad de hasta 2,5 m, y una parte más estrecha y menos profunda, con una profundidad de 0,5-1 m, en esta parte del estanque se crean condiciones que simulan la aproximación al área de desove. En la parte ampliada y con mayor profundidad, las condiciones se aproximan a las de los pozos de invernada.

El estanque para hembras tiene las siguientes dimensiones: longitud 130 m (parte ensanchada 100 m y estrecha 30 m), ancho 20-25 m en la parte ensanchada y 4-6 m en la parte estrecha. El fondo del tramo ampliado es de tierra, y en el tramo estrechado está pavimentado con pequeños adoquines lisos sobre hormigón empobrecido; Los guijarros se encuentran esparcidos en la unión de las partes ensanchadas y estrechadas.

El suministro de agua a los estanques es mecánico, la entrada de agua se realiza en forma de bandeja o tubería de hormigón armado. El agua se descarga a través de una estructura de drenaje, que garantiza tanto el drenaje completo del estanque como la capacidad de drenar varios niveles de agua. El nivel del agua se regula mediante lijadoras. El caudal de agua constante de 30 l/s se puede aumentar a 300 l/s.

Cultivo en jaulas tipo Kura. Se trata de un estanque de tierra de 75x12 m, dividido en tres tramos mediante una estructura tabique de hormigón, en medio del cual hay un hueco para instalar una contraventana.

En el primer tramo, de 105 m de largo y 3 m de profundidad, los productores permanecen durante un largo tiempo, de 1 a 1,5 meses. El llenado con agua dura de 10 a 12 horas y el vertido, de 5 a 6 horas.

Cuando se acercan las temperaturas de desove, los reproductores son trasladados a la segunda área, que es una piscina de concreto ovalada con paredes verticales. En una piscina de 7 m de largo, 5 m de ancho y 1 m de profundidad, se lleva a cabo una retención preliminar a corto plazo de hembras y machos antes de la inyección (1-3 días). La transición de la primera a la segunda sección se realiza en forma de un ascenso suave: los artes de pesca, los arrastres, que se utilizan para atrapar a los reproductores, son arrastrados a lo largo de guías especiales mediante cabrestantes eléctricos con control remoto. La segunda sección se llena de agua en 30 minutos.

En el tercer sitio, los productores son inyectados y mantenidos después de la inyección pituitaria. Esta zona cuenta con 2 piscinas de hormigón con paredes verticales. La longitud de la piscina es de 5 m, ancho 3,5, profundidad 1 m, se necesitan 15 minutos para llenar y descargar agua. Hay un dosel sobre la piscina. El traslado de las reproductoras de la segunda a la tercera sección, así como su entrega al departamento de explotación, donde se obtiene el caviar, se realiza mediante un polipasto eléctrico autopropulsado en cunas.

A principios de la primavera, se suministra agua más cálida desde el tanque de sedimentación, lo que permite inyectar peces en una zona más fechas tempranas. Los productores permanecen en las piscinas entre 1 y 3 días. El suministro y vertido de agua de las piscinas son independientes. El agua se suministra mediante una tubería (flauta) ubicada al otro lado de la piscina. Los chorros de agua de la flauta se dirigen en direcciones opuestas. Como resultado de este suministro de agua, mejora el régimen de oxígeno.

En la piscina están plantados 50 reproductores de beluga, 80 de esturión o esturión y 100 de esturión estrellado. El consumo de agua en las piscinas es de 30 l/s. La tercera parcela está rodeada por una valla alrededor de la cual se plantan árboles.

Fabricantes de cosechas

Para más uso efectivo productores en piscicultura gran importancia tiene conocimiento de grupos biológicos intraespecíficos.

El estudio de las poblaciones de especies de peces individuales hizo posible que Acad. L. S. Berg estableció la presencia de grupos biológicos intraespecíficos en algunos de ellos. El desarrollo adicional de este tema pertenece al prof. N. L. Gerbilsky.

La doctrina de los grupos biológicos intraespecíficos se basa en el reconocimiento del hecho de la diversidad biológica intraespecífica inherente a todas las especies de animales y plantas. En los peces, se asocia principalmente con el proceso de reproducción y se puede establecer conociendo el momento y la ubicación del desove, las diferencias en el ciclo sexual, las temperaturas de desove, el estado de los desove durante el período de su entrada a los ríos y la duración de la estancia de los reproductores en el río antes del desove.

El análisis biológico de la población de esturión permite seleccionar la ubicación correcta de los criaderos de peces, ayuda a determinar el momento de la pesca y el mantenimiento de los desovadores, así como a resolver la cuestión de la posibilidad de obtener de ellos productos reproductivos maduros en la parte inferior. tramos del río y doble uso de estanques para la cría de peces jóvenes durante una temporada de crecimiento. Conociendo los grupos biológicos intraespecíficos, es posible establecer un cronograma estacional que permita el uso más racional de los embalses y equipos de las empresas piscícolas.

Como ejemplo, demos los grupos biológicos del esturión Kura.

Los profesores N.L. Gerbilsky y B.N. Kazansky descubrieron que cuando se cruzan toros de esturión de diferentes grupos biológicos, aumenta su vitalidad durante el período embrionario.

El autor encontró que los juveniles obtenidos del cruce de toros de esturión de diferentes grupos biológicos son superiores a los juveniles de padres que pertenecen al mismo grupo biológico en muchos indicadores importantes de la piscicultura: se alimentan más intensivamente y crecen más rápido, tienen un mayor índice de gordura, mayor Contenido de proteínas y elementos de ceniza.

La adquisición de reproductores de esturión pertenecientes a diferentes grupos biológicos para fines de piscicultura se lleva a cabo en diferentes momentos.

Así, el esturión de principios de primavera se recolecta en el delta del Volga en la segunda quincena de abril o principios de mayo y se utiliza para obtener productos sexuales maduros después de una breve reserva en mayo. El esturión de invierno de la cosecha de otoño se recolecta en octubre, y de él se obtienen el caviar y el esperma después de un largo período de crianza en la segunda quincena de abril del año siguiente.

  • las hembras cercanas a la ovulación tienen un cuerpo delgado, mientras que en los peces menos maduros es muy espeso y aceitoso;
  • En los peces maduros, el pedúnculo caudal (desde el borde posterior de la aleta dorsal hasta el comienzo de la lámina caudal) tiene una sección transversal ovalada, es decir, su altura es significativamente mayor que su ancho, lo que indica que el pez está perdiendo peso. En peces menos maduros el pedúnculo caudal es más grueso y menos alto;
  • en individuos maduros el hocico es puntiagudo como resultado de la pérdida de peso, en peces menos maduros el hocico y toda la cabeza son más gruesos;
  • Los insectos de los peces maduros son menos afilados y la piel está más cubierta de una mucosidad espesa.

Para centrarse en estas señales, es necesario tener una amplia experiencia trabajando con fabricantes.

A.E. Andronov (1979) desarrolló un método para seleccionar hembras de esturión, basado en la medición de huevos. Entre las hembras de esturión estrellado que migran al río, hay muchos peces insuficientemente maduros, en cuyas gónadas hay una gran cantidad de caviar pequeño de baja calidad, por lo que es necesario seleccionar hembras con el caviar más grande. Los huevos se miden utilizando una sonda que tiene una escala con un valor de división de 2 mm y una marca cero a una distancia de 31 mm desde el comienzo de una ranura con un diámetro de 3 mm. En las hembras seleccionadas para la piscicultura, 15 huevos deben formar una fila que termine al menos en la segunda división de la escala de la sonda.

La segunda opción para seleccionar hembras de esturión estrellado es determinar el grado de polarización (posición extrema) del núcleo. El caviar extraído con una sonda se coloca en líquido Serra (6 partes de formaldehído, 3 partes de alcohol, 1 parte de hielo ácido acético), lavado con agua y cortado con navaja de seguridad según el eje animal-vegetativo.

La posición del núcleo en los huevos se evalúa con una lupa de 7×10 por la distancia desde el núcleo hasta la cáscara del polo animal. Las hembras de esturión estrellado se consideran buenas si su núcleo se ha alejado de su posición original a una distancia que no exceda el radio del huevo.

El investigador del Instituto de Investigación Pesquera de Azov, L.V. Badenko, ha desarrollado un método para seleccionar productores basándose en indicadores fisiológicos, que permite juzgar de manera más objetiva el valor de los productores para fines de piscicultura. El método se basa en el hecho de que el esturión durante las migraciones de desove ingresan a los ríos en diferentes estado fisiológico. Esto se explica tanto por la madurez desigual de los productos reproductivos como por niveles diferentes acumulación de sustancias de reserva en sus cuerpos. Así, según L.F. Golovanenko, los criadores agotados que no son aptos para la producción de caviar y esperma, así como los individuos que tienen productos sexuales en la etapa IV de madurez incompleta, deben reservarse y se pueden inyectar peces en la etapa IV completa. inmediatamente después de la cosecha en los sitios mineros.

Está claro lo importante que es evaluar los reproductores seleccionados para la piscicultura. Esto se hace más fácilmente mediante un análisis de sangre. Resultó que la respuesta más clara a la pregunta sobre la calidad de los productores puede darse mediante indicadores como el contenido de hemoglobina y la composición de proteínas séricas. Basándose en ellos, L.V. Badenko recomienda seleccionar a los productores.

Al comienzo del período de desove, las hembras tienen un nivel significativo de grasas y proteínas, tienen altas tasas de metabolismo y respiración, por lo que estos peces deben capturarse primero. Suelen tener los niveles de grasa, proteínas, metabolismo y respiración característicos de los peces que producen huevos completamente maduros.

El preparado se elabora a partir de las capturas con redes de cerco, seleccionando productores con un peso óptimo para el trabajo (no más de 15-20 kg para esturión y esturión estrellado y 100 kg para beluga), sin lesiones, contusiones, etc.

Al determinar el peso del pescado, está prohibido pesar a los productores seleccionados en balanzas decimales en el punto de recepción, ya que el pesaje sin agua afecta negativamente la condición del pescado. El peso debe determinarse utilizando una tabla especial que proporcione datos sobre la relación entre la longitud y el peso del cuerpo.

La selección de la edad de los productores también es de gran importancia. Según A.A. Popova, las mejores crías las producen los esturiones que vienen a desovar por segunda y tercera vez.

Los productores están preparados de tal manera que tengan una reserva en caso de desperdicio durante el transporte y el envejecimiento: para el esturión beluga y estrellado del 20 al 30% y para el esturión del 10 al 30% de numero total fabricantes preparados.

Los productores son seleccionados directamente del cerco de desembarco. Uno a uno, se colocan cuidadosamente en una camilla de lona y se trasladan a un pequeño barco de pesca viva (mattenka), en el que no se pueden recoger más de 10 individuos. La madre es entregada a un gran barco de peces vivos, en el que los productores son transportados al criadero de esturiones. En una ranura para peces vivos no autopropulsada del tipo Astracán se plantan 5 belugas o 10 esturiones, la misma cantidad de espinas o 16 esturiones estrellados. La longitud de la ranura tipo Astrakhan es de 13 m, el ancho de 5 my la profundidad de 0,8 m, la tasa de carga: un esturión por 1,5-2 m 3, un esturión por 1 m 3 y una beluga por 5-7 m 3. Para evitar lesiones a los peces, los marcos de las ranuras se cubren con tablas cepilladas.

Los productores entregados al criadero de peces son elevados al muelle mediante una grúa especial con una capacidad de elevación de 500 kg. Los peces son transportados en una cuna de lona llena de agua, suspendida de un marco tubular de metal. Está cubierto desde arriba con un delantal de lona.

Una vez elevada al muelle, la cuna se instala inmediatamente en un soporte tubular en la parte trasera de un automóvil o chasis autopropulsado y se transporta al estanque. La cuna también se puede mover mediante transporte monorraíl eléctrico. Entonces por plano inclinado La cuna junto con el pez se baja al depósito. El transporte y descarga del pescado también se puede realizar mediante un monorraíl y un elevador de carga. En este método de transporte, la cuna con los productores se retira del chasis mediante un elevador, se pasa sobre el estanque y luego se baja. Las vías de monorraíl con polipastos eléctricos también se utilizan para el transporte de fabricantes dentro de la fábrica.

De los estanques de los reproductores, los capturan con arrastres (artes de pesca tensos) equipados con flotadores y plomos. El flotador consta de flotadores de espuma colocados en la parte superior. En el marco inferior se fijan platinas de arcilla cocida. Se atan bloques de madera llamados fastidios a los extremos de las alas. La longitud del arrastre es un 40-50% mayor que el ancho del estanque y la altura es un 30-40% mayor que la mayor profundidad del embalse.

Los peces suelen capturarse con un solo lance longitudinal. Tiran de la red por los bordes a ambos lados del embalse. El hundimiento se realiza en una zona poco profunda en la cabecera del estanque. El lugar del hundimiento está reforzado con relleno de piedras y guijarros. A este tramo se conecta un carril elevado para mecanizar el levantamiento de los productores.

Los reproductores capturados se colocan en una cuna o en una camilla y se llevan a un polipasto, que entrega los peces a las jaulas donde se inyectan los reproductores.

Después de su uso, las calzas se cuelgan en perchas para que se sequen.

Preparación de las glándulas pituitarias.

Las glándulas pituitarias se recolectan mejor en primavera, durante la temporada de reproducción. En este momento, los productos reproductivos de los peces se encuentran en la etapa IV completa y la cantidad máxima de hormonas se acumula en la glándula pituitaria.

Es imposible extraer glándulas pituitarias de los peces desovados, ya que las hormonas que previamente contenían se consumen por completo durante la temporada de reproducción. Las glándulas pituitarias de peces inmaduros no se pueden utilizar para la captura. Al mismo tiempo, T. I. Faleeva señala que la glándula pituitaria se puede extraer en otoño e invierno.

Para extirpar la glándula pituitaria, se abre el cráneo de un pescado vivo o fresco con un trépano de acero, que es una varilla de metal equipada con un mango. En el extremo inferior de la varilla se monta un cilindro, que se puede mover verticalmente a lo largo de la varilla y fijar con un tornillo. En la base del cilindro hay dientes afilados y colocados que cortan el tejido cuando gira el trépano. Su diámetro es de 30 mm. Para obtener la glándula pituitaria de la beluga, se utilizan trépanos grandes con un diámetro de 35 a 40 mm.

El trépano se coloca en el centro de la cabeza del pez, detrás de los ojos. Para instalar con precisión el trépano, el cilindro se levanta hasta su capacidad máxima, como resultado de lo cual el extremo puntiagudo inferior de la varilla sobresale más allá del borde del cilindro. Después de esto, gire el mango y, después de dar varias vueltas, levante la varilla para evitar la destrucción de la glándula pituitaria. A continuación se enrosca completamente el trépano y se retira el tapón cortado, formado por hueso y cartílago. Se forma un agujero en la tapa del cráneo que, si el trépano está instalado correctamente, se encuentra por encima de la fosa pituitaria. Para obtener la glándula pituitaria también se utiliza electrotrefina, que es un taladro eléctrico, que facilita y acelera enormemente la preparación de la glándula pituitaria.

El cerebro y el líquido se extraen de la cavidad craneal. Aquí terminan las operaciones preparatorias y se puede proceder a la extirpación de la glándula pituitaria.

La glándula pituitaria se extrae utilizando una cuchara Volkmann, que tiene bordes afilados y un mango largo, que se utiliza en cirugía. Bajo ninguna circunstancia se debe tomar tejido glandular con pinzas, ya que esto puede destruir la glándula pituitaria y hacerla no apta para inyección. Con una cuchara Volkmann, la glándula pituitaria se puede extraer fácilmente y transferir a un recipiente. La glándula pituitaria extraída se desengrasa y se deshidrata, para lo cual se vierte acetona en un recipiente con tapa que cierra bien (jarra). Después de extraer cada glándula pituitaria, el recolector la coloca en acetona. Una vez extraídas todas las glándulas pituitarias, se colocan en una nueva porción de acetona durante 12 horas, luego se drena nuevamente y se vierte una nueva porción, en la que el desengrasado se produce después de 6-8 horas. Las glándulas pituitarias extraídas del frasco se secan sobre papel de filtro.

Para el tratamiento de la glándula pituitaria sólo se puede utilizar acetona anhidra y químicamente pura. El volumen de acetona debe ser de 10 a 15 veces mayor que la masa de la glándula pituitaria que contiene. La reutilización de acetona saturada de agua es inaceptable.

Para el almacenamiento a largo plazo, las glándulas pituitarias secas se colocan en bolsas de plástico y se etiquetan.

Es aconsejable seleccionar glándulas pituitarias de la misma masa en bolsas separadas para que en condiciones de campo en un criadero de peces sea posible calcular con precisión las dosis utilizadas.

La obtención de glándulas pituitarias debe realizarse de forma centralizada para varias plantas a la vez con la determinación de la actividad gonadotrópica del fármaco producido utilizando objetos de prueba.

La adquisición centralizada por parte de especialistas experimentados nos permite garantizar una glándula pituitaria de alta calidad y la posibilidad de utilizar dosis óptimas.

Determinación de la calidad de las glándulas pituitarias.

Para determinar la cantidad de hormonas ubicadas en la glándula pituitaria y la calidad de los fármacos resultantes, se realizan pruebas biológicas, que se reducen a dilucidar las diversas reacciones de los órganos de los animales que recibieron una inyección de los fármacos en estudio. Normalmente, las lochas y las ranas se utilizan para pruebas biológicas.

Después de la inyección en la glándula pituitaria, la locha siempre produce una reacción clara y cuantificable. La determinación de la unidad de actividad de la glándula pituitaria de los peces se lleva a cabo utilizando el concepto de unidad de locha (v.u.) establecido por B.N. Kazansky.

unidad de locha- esta es la cantidad de hormona gonadotrópica necesaria para provocar, 50-80 horas después de la inyección, la maduración de los huevos y la ovulación en lochas hembras de invierno en etapa IV de madurez que pesan 35-45 g a una temperatura del agua de 16-18 ° C en condiciones de laboratorio.

Para determinar la actividad del preparado hipofisario de prueba en unidades de locha, se administran simultáneamente a varios grupos de hembras inyecciones hipofisarias con diferentes dosis de glándula pituitaria. La dosis más pequeña que provocó la maduración corresponde a la unidad de locha. Sabiéndolo, puedes comparar el contenido de la hormona gonadotrópica en diferentes glándulas pituitarias.

El uso de lochas como objetos de prueba es difícil debido a la distribución limitada de su distribución en cuerpos de agua naturales.

Un objeto más accesible son las ranas. Se pueden obtener fácilmente en las cantidades necesarias en cualquier época del año. Una reacción positiva en las ranas es la aparición de espermatozoides móviles en la cloaca después de la inyección de una suspensión de la glándula pituitaria en los sacos linfáticos dorsales. Esta reacción ocurre muy rápidamente, después de 40 a 50 minutos. Ésta es la segunda ventaja de trabajar con ranas en comparación con las lochas.

Las ranas macho se recolectan a finales de otoño en los lugares donde se concentran para pasar el invierno. Se mantienen en agua a una temperatura de 1,5°C, bajo flujo y poca luz.

Las pruebas del fármaco deben realizarse anualmente al mismo tiempo. Entonces, en el delta del Volga lo hacen en la primera quincena de marzo.

Las ranas salen del estado invernal elevando lentamente la temperatura del agua y llevándola después de una semana a 16-18°C. Las pruebas dan mejores resultados a temperaturas de 18-23°C.

La verificación se realiza de la siguiente manera. Primero, se seleccionan lotes de 8 a 10 glándulas pituitarias, que difieren en color y tamaño. Luego se pesan en una balanza analítica con una precisión de 0,1 mg. La preparación pesada se muele en un mortero, humedeciendo gradualmente hasta obtener una consistencia cremosa homogénea. Luego se agrega solución salina a la preparación y la suspensión está lista para inyección.

La inyección se realiza simultáneamente en 5 ranas. Se prueban un total de 3 grupos de ranas. A cada grupo se le inyecta una dosis determinada: 0,2; 0,3 y 0,4 mg de preparación seca de la glándula pituitaria.

Un indicador de la actividad biológica del preparado hipofisario de prueba es la dosis mínima de peso que provoca una reacción espermática en más de la mitad de las ranas inyectadas. La actividad biológica del fármaco se calcula dividiendo la unidad por el indicador de peso de la dosis mínima efectiva.

Una unidad de rana(l.e.) es la actividad de la dosis mínima en peso del fármaco que provoca la esperma en una rana macho.

El preparado acetonado de la hipófisis debe tener una actividad estándar previamente conocida, que equivale a 3,3 unidades de rana.

El uso del medicamento le permitirá utilizar las glándulas pituitarias recolectadas de manera más económica. Además, en los casos en que tras una inyección hipofisaria no se observa maduración de los productores, se facilita el análisis de las causas de este fenómeno.

También hay que tener en cuenta que la dosis del fármaco administrado por unidad de masa de los productores debe calcularse teniendo en cuenta la actividad biológica de cada lote determinado de glándulas pituitarias.

Además del método anterior para determinar la actividad de las glándulas pituitarias acetonadas, existen varios otros métodos para realizar dichas pruebas. En particular, B.F. Goncharov propuso utilizar el sistema de maduración de los óvulos fuera del cuerpo para determinar la calidad de las glándulas pituitarias. La verificación se realiza de la siguiente manera. Se toma una muestra de caviar con una sonda y se coloca en una solución fisiológica con una solución de albúmina cristalina al 0,1%. Allí también se añade una suspensión de la glándula pituitaria. Si la hembra está preparada para la maduración, la vesícula embrionaria se disuelve.

Las ventajas del método propuesto son que es sensible, permite obtener material digital de gran tamaño y puede utilizarse directamente en los criaderos de peces durante la temporada de trabajo con los productores.

Con este método, la dosis de hipófisis inyectada se calcula en miligramos de hipófisis acetonada por 1 kg de peso del productor o en miligramos por hombre o mujer.

La dosis correcta determina en gran medida la calidad de los productos sexuales resultantes. Si la dosis es insuficiente, no se producirá la maduración de los reproductores. Con una dosis aumentada droga hormonal la calidad de los óvulos o del esperma disminuye.

A temperaturas más bajas (dentro del rango de temperatura de desove), se requieren dosis más altas del fármaco para la maduración de los reproductores; a temperaturas cercanas a limite superior temperaturas de desove, la cantidad de fármaco hormonal disminuye. A los machos maduros, en comparación con las hembras, se les debe administrar menos medicación hormonal.

Los criaderos de esturiones reciben glándulas pituitarias acetonadas con una actividad gonadotrópica predeterminada. Sin embargo, no siempre permanece constante. Cuando la glándula pituitaria se almacena durante más de un año, su actividad gonadotrópica disminuye. El proceso de deterioro de la calidad de las glándulas pituitarias se ralentiza cuando se almacenan en un recipiente herméticamente cerrado en una habitación seca a baja temperatura.

Inyección pituitaria

La glándula pituitaria seca se muele hasta convertirla en polvo con una mano de mortero en un mortero limpio de vidrio o porcelana, luego se pesa la dosis requerida en una balanza analítica o de torsión para cada lote de productores inyectados por separado para hembras y machos.

Se añade una dosis pesada a una solución fisiológica (6,5 g de sal de mesa químicamente pura disuelta en 1 litro de agua destilada) y se muele un poco más. Luego se añade a esta masa otra porción de solución fisiológica en tal cantidad que queden 2 cm 3 de suspensión por fabricante. Luego se agita bien varias veces con una jeringa y se transfiere a un frasco con cuello ancho y tapón esmerilado.

Antes de comenzar la inyección, el contenido del frasco se mezcla bien varias veces. La suspensión se inyecta en los músculos de la espalda con una jeringa. Después de la inyección, se retira la aguja con cuidado. El lugar de punción de la piel se presiona con un dedo y luego se masajea un poco. Esto debe hacerse para evitar fugas del medicamento inyectado.

Cuando la temperatura del agua es 2-3°C más baja que la temperatura de desove, la dosis de la glándula pituitaria aumenta en un 30-50%.

Las inyecciones pituitarias dan resultados positivos sólo al completar la cuarta etapa de madurez de los productos reproductivos en los productores. Un indicador de este estado de los óvulos es el desplazamiento de sus núcleos existentes hacia el canal (micrópilo), a través del cual los espermatozoides penetran en el óvulo.

La cuarta etapa en los machos se caracteriza por la finalización del proceso de formación de espermatozoides. En estos machos predominan los espermatozoides maduros y completamente formados.

Se obtienen buenos resultados con inyecciones únicas del fármaco acetonado. Sin embargo, a veces no son lo suficientemente eficaces. Esta situación se produce cuando Estado general productores se deteriora o el desarrollo de los huevos no se completa por completo. En tal situación, a veces es aconsejable realizar inyecciones repetidas de pequeñas dosis del fármaco. Sin embargo, siempre hay que recordar que las dosis del preparado de la hipófisis aumentadas en comparación con las dosis científicamente basadas, conducen a una disminución en la calidad de las células germinales maduras resultantes. Esto se explica por el hecho de que el polvo acetonado de la hipófisis también contiene hormonas que no son directamente necesarias para la maduración de las células germinales. Como resultado, efectos secundarios, el cuerpo entra en un estado de gran tensión (estrés).

El éxito de las inyecciones hipofisarias depende en gran medida de cómo se mantengan los criadores. En todas las etapas de esta operación, antes, durante y después de la introducción de la preparación de la glándula pituitaria en el cuerpo del pez, las hembras y los machos deben manipularse con mucho cuidado para evitar lesiones. En los reservorios destinados a la reproducción, debe haber un buen régimen de oxígeno, las hembras y los machos deben mantenerse separados. Antes de la inyección, se trasladan a pequeñas piscinas o jaulas de hormigón, en las que se crean. condiciones óptimas para asegurar la maduración de los productos reproductivos después de la introducción de un fármaco hormonal en el cuerpo.

Determinación del tiempo de maduración de los productores.

Tras la introducción de la glándula pituitaria, los peces inician un período de maduración (hasta la obtención de huevos maduros), cuya duración depende de la temperatura del agua y del estado inicial de las hembras.

A. S. Ginzburg y T. A. Detlaf descubrieron que a la misma temperatura promedio, el período de maduración es siempre mucho más corto que el período de desarrollo embrionario (4-6 veces). De ello se deduce que con un aumento o disminución de la temperatura, la duración de los períodos de maduración y desarrollo embrionario cambia en consecuencia. La identificación de tal patrón permitió a A. S. Ginzburg y T. A. Detlaff construir gráficos de los tiempos probables de maduración de las hembras de esturión a diferentes temperaturas dependiendo de la duración de su desarrollo embrionario.

Los gráficos muestran curvas que indican el momento en que se puede esperar que las hembras maduren después de las inyecciones pituitarias. Usando los gráficos, también puede determinar el momento de observar a las hembras y tomar muestras calculando primero la temperatura promedio durante el período de maduración.

El cálculo se realiza de la siguiente manera. A las 19:00 horas de la víspera del día de la recepción de los huevos y a las 7:00 de la mañana del día de la recogida de los huevos, se calcula la temperatura media, a partir del momento de la inyección de los desovadores. Luego en eje horizontal Encuentre un punto correspondiente a la temperatura promedio durante el período de maduración y restablezca una perpendicular desde él hasta que se cruce con las curvas. El punto de intersección con la curva muestra cuántas horas después maduran las primeras hembras. El número de horas resultante se suma al tiempo de inyección y se determina la hora de inicio de la observación de las hembras. El punto de intersección con la curva permite determinar de la misma forma el momento de maduración de muchas hembras.

Con este programa, es posible determinar el momento de la inyección de una suspensión de glándula pituitaria en las hembras de esturión para obtener caviar en un momento conveniente para el trabajo. Como resultado, se facilita el trabajo con los productores, se reduce el número de visitas necesarias a las hembras, se mejora la calidad del caviar y se reducen las pérdidas por maduración excesiva o insuficiente.

Al calcular el indicador requerido, primero determine la temperatura promedio el día antes de la inyección. Luego, en el eje horizontal del gráfico de maduración femenina, se encuentra un punto correspondiente a esta temperatura, y desde él se restablece una perpendicular hasta que se cruza con la curva. Desde el punto de intersección se baja una perpendicular sobre el eje vertical y a partir de ella se determina el número de horas que pasarán a una determinada temperatura media desde la inyección hasta la maduración de las primeras hembras. Al número de horas así calculado se le resta la hora de inicio de la jornada laboral y se obtiene la hora en la que es necesario inyectar a las hembras.

VZ Trusov también propuso un método para determinar el grado de madurez de las gónadas femeninas sin abrir el pez. Este método se reduce a extraer varios óvulos del ovario femenino mediante una sonda. Se transfieren con unas pinzas a un tubo de ensayo con formaldehído. Los tubos se llevan a una habitación donde está instalado un microtomo de congelación. Los huevos se colocan sobre la mesa de modo que las secciones de la navaja del micrótomo pasen por sus polos animal y vegetativo. Luego, los huevos se vierten con agua con una pipeta ocular, después de lo cual se cubre la mesa con una tapa de metal y las secciones se congelan agregando dióxido de carbono de un globo.

Se realizan secciones hasta que aparece un núcleo claramente visible a simple vista o bajo una lupa. Si se encuentra cerca de las membranas, entonces el estado de la gónada femenina se encuentra en la etapa IV completa de madurez.

El método propuesto por V. Z. Trusov para determinar el grado de madurez de las gónadas femeninas es relativamente sencillo, fiable y requiere poco tiempo: el análisis de una muestra se puede realizar en 5 a 8 minutos.

La maduración de las hembras también se controla mediante observación directa. El control se intensifica durante las últimas seis horas, el período más probable de maduración a una temperatura determinada.

Un método rápido aún más simple para determinar la madurez de las gónadas en reproductores de esturión fue desarrollado por el Prof. B. N. Kazansky, Yu. A. Feklov, S. B. Podushka y A. N. Molodtsov. La esencia del método es que mediante una sonda se toma una muestra de caviar de la parte posterior del ovario y se introduce la sonda en la cavidad del cuerpo en un ángulo de 30°, lo que le permite evitar tocar órganos vitales. La varilla tiene una punta que se llena de huevos y una varilla que permite vaciarla.

La longitud total de la sonda es de 125 mm, la punta es de 65 mm, incluida la parte puntiaguda: 20 mm. El diámetro exterior de la varilla es de 4,5 mm. La sonda termina con un mango ubicado perpendicular a la varilla. Para determinar el grado de finalización del cuarto estado de madurez, los huevos extraídos con una sonda se hierven durante 2 minutos. Los huevos endurecidos se cortan con una navaja de afeitar a lo largo del eje desde el polo animal hasta el polo vegetativo. Las secciones se examinan con una lupa o binocular. El grado de polarización del huevo está determinado por la posición del núcleo con respecto al polo animal. El índice de polarización está determinado por la fórmula propuesta por Yu. A. Feklov: l = A/B, donde l es el índice de polarización; A es la distancia desde el núcleo hasta la cáscara; B es la mayor distancia a lo largo del eje del animal al polo vegetativo.

Cuanto menor es el valor de l, más polarizado está el óvulo y más completa está la etapa IV de madurez gonadal. La mayor polarización del ovocito se observa en l = l/30: l/40.

Si el abdomen de la hembra, al palparlo, resulta más blando que antes de la inyección, esto indica la posible maduración de los huevos en este individuo. Para asegurarse de esto, se debe colocar una camilla para peces con agua debajo de la hembra, levantarla y colocarla sobre el caballete. En este momento, el pez hace movimientos bruscos, y si los huevos están maduros, se pueden ver los huevos liberados en la camilla. Una vez que la hembra se ha calmado, se la pone de lado y se palpa su vientre. En un individuo maduro, cuando se masajea el tercio posterior del vientre, el caviar fluye libremente en un chorro.

Así, como señalaron A. S. Ginzburg y T. A. Detlaf, los indicadores de apertura de las hembras son un abdomen blando, huevos expulsados ​​​​en un fuerte chorro y hundimiento. pared abdominal cuando la hembra se levanta.

Es necesario obtener inmediatamente óvulos de una hembra completamente madura.

Obtención de caviar maduro

El trabajo para obtener productos reproductivos maduros, incluida la recolección, fertilización y lavado de huevos, se lleva a cabo en departamento operativo, que suele estar ubicado en el criadero. Dispone de equipos para la obtención de productos reproductivos, como un cabrestante, una pinza y un frigorífico (KX-6B), en los que los productores se almacenan sin caviar ni esperma (el caviar y el esperma se obtienen antes de su entrega en el punto de adquisición). ). En el departamento operativo se encuentran mesas de producción de 126x84x90 cm, tipo SPSM-4.

Se aturde a una hembra madura con un fuerte golpe en la nariz con un mazo de madera, después de lo cual se la desangra cortando las arterias caudales o branquiales, se lava con agua y se seca. Para evitar que la sangre entre en el recipiente con el caviar, se venda el lugar de la incisión. El pescado, listo para abrir, se levanta por la cabeza a través de un travesaño o bloque y se asegura. Se hace una incisión en el abdomen de abajo hacia arriba desde la abertura genital de 15 a 20 cm, la incisión se hace poco profunda y ligeramente hacia el lado de la línea media. Para evitar una posible pérdida de huevos, la cola de la hembra se mantiene por encima de la pelvis. Parte del caviar maduro fluye libremente hacia el recipiente a lo largo de su borde. Después de esto, se corta el abdomen hasta las aletas pectorales y los huevos restantes, libremente separados, se transfieren a la pelvis. También puedes utilizar óvulos benignos disponibles en los oviductos para la fertilización.

La cantidad de huevos obtenidos depende del peso de la hembra.

Los huevos de diferentes hembras no se mezclan. Todas las operaciones con caviar se realizan con extrema precaución. El caviar sólo se puede recoger en recipientes con esmalte intacto. En un recipiente con una capacidad de 12 a 15 litros no se colocan más de 2 kg de caviar.

Sólo se fertilizan óvulos maduros y maduros, que deben poder identificarse.

Los huevos verdes se diferencian de los maduros por tener el mismo color en todas las zonas. Los huevos maduros se decoloran muy lentamente. solución de agua azul de metileno. Esta solución no decolora en absoluto los huevos verdes, pero los huevos demasiado maduros se decoloran mucho más rápido que los maduros. Este método para determinar la calidad del caviar de esturión para la cría de peces fue desarrollado por M. F. Vernidub, profesor asociado de la Universidad Estatal de Leningrado. Se reduce a lo siguiente: se colocan 2 cm 3 de caviar (sin líquido de la cavidad) en una botella o tubo de ensayo bien cerrado lleno con 10 cm 3 de una solución recién preparada de azul de metileno (una gota de una solución acuosa al 0,05% de pintura por 10 cm 3 de agua), varias Agitar una vez y tener en cuenta el tiempo durante el cual la solución se decolora.

En algunos casos, la decoloración no se produce dentro del plazo habitual para el caviar de esta calidad.

Determinar la preparación de los óvulos para la fertilización.

L. T. Gorbacheva, empleada del Instituto de Investigación Pesquera de Azov, propuso evaluar la preparación de los huevos para la fertilización en una fábrica mediante la velocidad a la que las cáscaras de los huevos se vuelven pegajosas después de la fertilización.

Para determinar cuándo comenzar la inseminación de los óvulos que ya han sido extraídos de la cavidad corporal de la hembra, se toman entre 100 y 150 óvulos, se inseminan con esperma y se determina el tiempo durante el cual los óvulos de la muestra se adhieren a la placa de Petri. Después de esto, según un cronograma especial, se fija el momento en que se deben inseminar todos los óvulos. Para el caviar de esturión, se considera que la mejor condición para la fertilización es que al menos el 90-95% de todos los óvulos fertilizados se peguen en 9-16 minutos; para el caviar sevruga este estado corresponde a un tiempo de 6 a 10 minutos. Este caviar se desarrolla normalmente.

El caviar de esturión demasiado maduro comienza a pegarse después de 4 a 6 minutos, y el esturión estrellado, después de 2 a 4 minutos. Estos huevos producen una mayor mortalidad durante el período de incubación.

Sólo se utilizan óvulos para la fertilización. Alta calidad, cuyos indicadores son:

  • la presencia en el polo embrionario de una mancha de color diferente al de la otra mitad del huevo;
  • huevos de forma redonda regular y tamaño igual, así como blastómeros coloreados formados después de la aparición de dos surcos de escisión;
  • aparición después de 6-12 minutos en esturión y después de 5-10 minutos en esturión estrellado un espacio estrecho entre Concha exterior y huevos de una muestra de huevo lavada rápidamente del líquido de la cavidad (en huevos demasiado maduros este proceso comienza antes, en huevos inmaduros, más tarde);
  • una cierta masa de huevos; 1 g de caviar de beluga maduro debe contener de 35 a 40 huevos, de esturión, de 45 a 50 huevos, de esturión estrellado, de 75 a 90 huevos.

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EMBRIOLOGÍA

Conferencia 7

Las células sexuales de los peces se forman en las gónadas, las glándulas sexuales. De acuerdo con los conceptos modernos, en los peces el rudimento de las células germinales primarias, los gonocitos, se separa al final de la gastrulación. Su fuente es el endomesodermo primario y el periblasto es un refugio temporal antes del inicio de la migración hacia la gónada. Es posible que haya células germinales primarias en las gónadas de los peces adultos.

El proceso de desarrollo de las células germinales femeninas se llama oogénesis. Los gonocitos pasan al rudimento de la gónada femenina y en él se produce todo el desarrollo posterior de las células germinales femeninas. La estructura de la ovogénesis es básicamente la misma en todos los animales. Una vez en el ovario, los gonocitos se convierten en oogonias.

La oogonia es una célula germinal inmadura capaz de realizar mitosis. Oogonia lleva a cabo el primer período de ovogénesis: el período de reproducción. Durante este período, las oogonias se dividen mitóticamente. El número de divisiones es específico de cada especie. En peces y anfibios, la periodicidad de las divisiones mitóticas de las oogonias está asociada con la reproducción estacional y se repite a lo largo de la vida.

El siguiente período de ovogénesis es el período de crecimiento. Las células sexuales en este período se llaman ovocitos de primer orden. Pierden la capacidad de sufrir división mitótica y entrar en la profase I de la meiosis. Durante este período, se produce el crecimiento de las células germinales.

Hay etapas de crecimiento pequeñas y grandes. El proceso principal del período de gran crecimiento es la formación de la yema (vitelogénesis, vitelo - yema).

Durante el período de pequeño crecimiento (previtelogénesis, crecimiento citoplasmático), los volúmenes del núcleo y el citoplasma aumentan de manera proporcional e insignificante. En este caso, las relaciones nuclear-citoplasmáticas no se alteran. Durante el período de gran crecimiento (vitelogénesis), la síntesis y entrada de inclusiones en el citoplasma se intensifica mucho, lo que conduce a la acumulación de yema. La relación núcleo-citoplasma disminuye. A menudo, el huevo durante este período aumenta considerablemente y su tamaño aumenta decenas de veces (humanos), cientos de miles de veces (ranas, moscas de la fruta) o más (tiburones y aves).

Se distinguen los siguientes tipos de nutrición de óvulos:

Tipo fagocítico: se encuentra en las células germinales de animales que no tienen gónadas (esponjas, celentéreos). Con el método fagocítico de vitelogénesis, los ovocitos, al moverse a través del espacio intercelular, pueden fagocitar células somáticas del cuerpo.

Tipo solitario: se encuentra en pólipos hidroides coloniales, equinodermos, gusanos, insectos sin alas y lancetas. Con el método de nutrición en solitario, el ovocito recibe ingredientes del líquido celómico y de la gónada. Las proteínas de la yema se sintetizan en el retículo endoplásmico y la formación de gránulos de yema se produce en el aparato de Golgi.


Tipo alimentario: realizado con la ayuda de células auxiliares; divididos en nutricionales y foliculares.

El método nutricional de nutrición se encuentra en gusanos y artrópodos. En ellos, el ovocito en el ovario está rodeado de trofocitos (células lactantes), con los que está conectado por puentes citoplasmáticos. La célula que entra en contacto con una gran cantidad de células hermanas (células nodrizas) se convierte en un ovocito. El modo de nutrición folicular se encuentra en la mayoría de los animales. Las células auxiliares en este método de nutrición son las células gomáticas del ovario. El folículo, es decir, el ovocito, junto con las células foliculares auxiliares, entra en la ovogénesis. La mayor parte de la yema se forma debido a la ingesta de sustancias del exterior y los ovocitos con síntesis exógena de yema crecen a gran velocidad. En la zona superficial del ovocito aparecen numerosas vesículas pinocíticas que contienen vitelogenina, un precursor de las proteínas de la yema procedentes de la sangre.

Las vitelogeninas en diferentes animales se sintetizan en diferentes tejidos somáticos y, en el proceso de evolución, se concentran gradualmente en un órgano estrictamente definido. En los vertebrados, la vitelogenina es producida por el hígado de las hembras. La vitelogenina es sintetizada por las células del hígado y está bajo control hormonal.

Para comenzar el proceso de desarrollo del embrión desde el momento en que se fertiliza el óvulo, se realiza cierta preparación para este evento en el propio óvulo. El núcleo del óvulo debe alcanzar el estado adecuado para poder unirse con el núcleo del espermatozoide; en este caso, parte del material cromosómico se elimina del óvulo, convirtiéndose en pequeños cuerpos polares (este proceso generalmente no se completa en el momento de la fertilización, sino que se suspende temporalmente). Además, el contenido citoplasmático del huevo se vuelve bastante nivel alto organización; En ese momento, la naturaleza de su simetría futura parece haber sido determinada en gran medida, aunque otros acontecimientos pueden modificarla. La cantidad de yema que contiene un huevo varía mucho; Sirve como factor principal que determina el tamaño del huevo y el tipo de trituración. En algunos animales, en particular en la lanceta y en el hombre, los huevos contienen poca yema. Estos huevos pueden denominarse oligolecitos. El otro tipo de huevo es algo más grande y contiene una cantidad moderada de yema; se llaman mesolecitos. Los huevos mesolecitos típicos incluyen huevos de rana; estos también incluyen huevos de anfibios de cola, peces pulmonados, peces con aletas radiadas inferiores y lampreas.

Los huevos mesolecitos son tan comunes entre las formas acuáticas primitivas que probablemente eran característicos de los vertebrados ancestrales. Los tiburones y las rayas, por un lado, y los reptiles y aves, por el otro, tienen huevos grandes; se llaman polilecitales porque la mayor parte de la célula está ocupada por la yema y el citoplasma, que es relativamente pequeño, se concentra en un polo.

Los huevos también se clasifican según la distribución de la yema en su interior. En algunos huevos, principalmente los oligolecitos, la yema se distribuye de manera bastante uniforme por toda la célula; Estos huevos se llaman isolecitoles. En los huevos meso y polilecitos, la yema se concentra en la mayoría de los casos en la mitad del huevo; para huevos que flotan en el agua, en la mitad inferior. Estos huevos se denominan telolecitoles. En los peces óseos modernos, los huevos también son muy ricos en yema, pero su tamaño varía.

La concentración de yema en un hemisferio indica claramente la presencia de una determinada organización, o polaridad, en el huevo: en su extremo superior hay un polo animal y en el inferior, uno vegetativo; La mitad superior del huevo está llena de citoplasma relativamente transparente y la mitad inferior está llena de yema.

Los huevos de peces, al igual que los huevos de vertebrados, tienen un tamaño muy variado; son, por regla general, células esféricas que contienen, además del núcleo y una cierta cantidad de citoplasma transparente, una yema que sirve de alimento al embrión en desarrollo. Los huevos de pescado suelen ser esféricos, aunque existen otras formas. La estructura de los huevos es característica distintiva no sólo para género, familia, sino también para categorías más amplias.

Los huevos de pescado difieren no solo en la forma, sino también en el tamaño, el color, la presencia o ausencia de gotas de grasa y la estructura de la cáscara. El tamaño de los huevos es el mismo que los demás. características morfológicas, es una característica estable de la especie. Los peces grandes ponen huevos de mayor diámetro que los pequeños, pero la amplitud de las fluctuaciones en el tamaño de los huevos permanece constante para la especie incluso en diferentes cuerpos de agua, aunque sus valores promedio pueden cambiar en una dirección u otra.

El tamaño de los huevos depende del contenido del nutriente que contienen: la yema y varía significativamente (en mm): espadín - 0,8-1,05, carpa - 1,4-1,5, carpa herbívora - 2,0-2,5, esturión ruso - 3,0-3,5 , salmón - 5,0-6,0, salmón chum - 6,5-9,1, tiburón polar - 80 (sin cápsula), tiburón ballena - 670 (longitud con cápsula) .

Entre los numerosos peces óseos, los huevos más pequeños son característicos de la platija, los más grandes, del salmón, especialmente del salmón chum. El gran volumen de yema de las huevas de salmón, a diferencia de otros pescados, proporciona más un largo periodo desarrollo, la aparición de larvas más grandes capaces de consumir organismos alimentarios más grandes en la primera etapa de alimentación activa. Los huevos más grandes se observan en peces cartilaginosos. El desarrollo de embriones en algunos de ellos (katran) dura casi 2 años.

El color de los huevos es específico de cada especie. En el vendace son amarillos, en el salmón son naranjas, en el lucio son gris oscuro, en la carpa son verdosos, en los verdes son verde esmeralda, azul, rosa y violeta. Los tonos amarillentos y rojizos se deben a la presencia de pigmentos respiratorios: los carotenoides. El caviar se desarrolla en condiciones menos favorables condiciones de oxigeno, generalmente de color más intenso. De los salmónidos, el salmón rojo tiene el caviar de color rojo carmesí más brillante y se desarrolla en aguas relativamente pobres en oxígeno. Los huevos pelágicos, que se desarrollan con suficiente oxígeno, están poco pigmentados.

Los huevos de muchos peces contienen una o más gotas de grasa que, junto con otros métodos, como el riego, proporcionan flotabilidad a los huevos. Los huevos están recubiertos por fuera con cáscaras, que pueden ser primarias, secundarias y terciarias.

La membrana primaria, vitelina o radiada, formada por el propio huevo, está atravesada por numerosos poros a través de los cuales los alimentos ingresan al huevo. nutrientes durante su desarrollo en el ovario. Este caparazón es bastante fuerte y el esturión tiene dos capas.

Por encima de la concha primaria, la mayoría de los peces desarrollan una concha secundaria, gelatinosa, pegajosa, con varias proyecciones para fijar los huevos al sustrato.

En el polo animal de ambas membranas hay un canal especial, el micropilo, a través del cual los espermatozoides penetran en el óvulo. Los teleósteos tienen un canal; los esturiones pueden tener varios. También hay membranas terciarias: albuminosas y córneas. La córnea se desarrolla en peces cartilaginosos y mixinos, mientras que la membrana proteica se desarrolla sólo en peces cartilaginosos. La córnea de los peces cartilaginosos es mucho más grande que el huevo en sí, no le corresponde en forma, está aplanada y comprime ligeramente el huevo. A menudo, de él salen hilos córneos, con la ayuda de los cuales el huevo se adhiere a las plantas acuáticas. En especies ovovivíparas y vivíparas, la córnea es muy delgada y desaparece poco después del inicio del desarrollo.

Partenogénesis. El desarrollo de un óvulo es posible sin la participación de un espermatozoide, y en este caso se llama partenogénesis (del griego "partenosis" - virgen, "génesis" - emergencia).

Hay casos en los que los organismos se desarrollan normalmente a partir de huevos no fertilizados puestos.

Cuando hablan de partenogénesis, se refieren a un desarrollo basado en el pronúcleo femenino. Sin embargo, en algunos casos es posible el desarrollo a partir del pronúcleo masculino, y luego se habla de androgénesis, oponiéndola a la ginogénesis. La ginogénesis es una forma de desarrollo unisexual en la que el espermatozoide activa el óvulo, incitándolo a desarrollarse, pero su núcleo (pronúcleo masculino) no se fusiona con el femenino y no participa en la bebida. Se conoce ginogénesis natural en una especie de carpa cruciana, cuyos óvulos son inseminados con esperma de otra especie, lo que activa los óvulos, pero el núcleo del espermatozoide no participa en la formación del cigoto. La androgénesis es un fenómeno mucho más raro, y cuando ocurre (natural o artificial), el desarrollo ocurre sin el pronúcleo femenino sobre la base del núcleo masculino y el pronúcleo masculino.

Células reproductoras masculinas - esperma a diferencia de los ovocitos, son pequeños, numerosos y móviles. Cada grupo de espermatozoides es un derivado de una célula inicial y se desarrolla como un clon sincicialmente. celdas conectadas, y en términos de número y algunas características estructurales da un grupo de células móviles individuales. El desarrollo de los espermatozoides es similar en diferentes animales. La espermatogénesis siempre está estrechamente asociada con células auxiliares de origen somático. La posición relativa de las células reproductoras y somáticas caracteriza de manera bastante específica la espermatogénesis y es de gran interés. Es más correcto considerar el desarrollo de un espermatozoide no como una “biografía” de una célula reproductora masculina individual, sino como la historia de vida de un clon.

Las células germinales masculinas nunca se desarrollan solas, sino que crecen como clones de células unidas sincitialmente, donde todas las células se influyen entre sí.

En la mayoría de los animales, las células somáticas auxiliares del epitelio folicular (“soporte”, “alimentación”) participan en el proceso de espermatogénesis.

Las células germinales y las células auxiliares asociadas en una etapa temprana de desarrollo están separadas de las células del soma por una capa de células fronterizas que realizan una función de barrera. Dentro de la propia gónada, se produce una mayor separación estructural en forma de quistes o túbulos, donde las células foliculares auxiliares crean un entorno específico para la espermatogénesis.

Las células germinales primarias, incluidas las masculinas, en muchos animales pueden identificarse mucho antes de la formación de la gónada y, a menudo, incluso en etapas muy tempranas de desarrollo. Las células germinales aparecen temprano en el desarrollo embrionario en los pliegues genitales que se extienden a lo largo de la cavidad corporal. En el salmón juvenil (salmón rosado, salmón chum, salmón rojo, salmón masu, salmón coho y salmón del Atlántico), las células germinales primarias se encuentran en la etapa de formación de los conductos renales primarios. En el embrión de salmón del Atlántico, se identificaron células germinales primordiales a la edad de 26 días. En los alevines, las gónadas ya se pueden encontrar en forma de cordones parecidos a pelos.

Rasgo distintivo El proceso de desarrollo de los espermatozoides, la espermatogénesis, es una reducción múltiple de células. Cada espermatogonia original se divide varias veces, lo que da como resultado una acumulación de espermatogonias debajo de una membrana, lo que se denomina quiste (etapa de reproducción). Las espermatogonias formadas durante la última división aumentan ligeramente, en su núcleo se producen transformaciones meióticas y las espermatogonias se convierten en espermatocitos de primer orden (etapa de crecimiento). Luego ocurren dos divisiones sucesivas (etapa de maduración): un espermatocito de primer orden se divide en dos espermatocitos de segundo orden, debido a cuya división se forman dos espermátidas. En la siguiente etapa de formación, la última, las espermátidas se convierten en espermatozoides. Así, de cada espermatocito se forman cuatro espermátidas con la mitad de un conjunto de cromosomas (haploides). La cubierta del quiste estalla y los espermatozoides llenan el túbulo seminífero. Los espermatozoides maduros salen del testículo a través del conducto deferente y luego a través del conducto.

El espermatozoide introduce material nuclear en el óvulo, que juega un papel importante en la herencia y en las transformaciones en las etapas posteriores del desarrollo, pero no tiene un efecto significativo en las primeras etapas. El huevo contiene todo lo necesario para su pleno desarrollo. adulto. Un óvulo maduro está listo para desarrollarse; sólo espera el estímulo adecuado para comenzar a descomponerse en unidades celulares, lo que constituye el primer paso necesario para el desarrollo de tejidos y órganos de un organismo adulto complejo. En muchos casos, este proceso puede desencadenarse por estímulos físicos o químicos. Sin embargo, en condiciones normales, el inicio del proceso de desarrollo es estimulado por la penetración de los espermatozoides en el óvulo.

Preguntas para el autocontrol

1. ¿Qué tipo de células sexuales de peces conoces? Describelos. ¿Durante qué proceso se forman las células sexuales?

2. ¿Qué tipos de nutrición existen para los óvulos?

3. ¿Qué tipos de huevos tienen los peces? Clasificación por tamaño, forma, tamaño.

4. Describe la estructura del huevo de pez. La estructura de las conchas. ¿Qué es un micropilo?

5. ¿Qué es la partenogénesis?

6. ¿Cómo se llaman las células reproductoras masculinas? ¿En qué formas y tipos vienen?

BIBLIOGRAFÍA

Principal

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