Skale dojrzałości (dla osobników jednocześnie rozmnażających się):
1) nieletni(juv) osobniki (niedojrzałe), płeć jest nie do odróżnienia gołym okiem. Gonady wyglądają jak cienkie nitki;
2) przygotowawczy: gonady zaczynają dojrzewać, można rozpoznać płeć, u większości ryb faza ta trwa przez całe lato;
U kobiet jajniki wyglądają jak przezroczyste sznurki, wzdłuż których biegną naczynia krwionośne. Jaja nie są widoczne gołym okiem.
U samców jądra mają wygląd spłaszczonych sznurków i są różowo-białawe;
3) dojrzewanie: jajniki zwiększają swoją objętość; ryby składające tarło wiosenne mogą pozostać na tym etapie od drugiej połowy lata do wiosny przyszłego roku.
U samic jaja są dobrze widoczne gołym okiem, mają różnorodny kształt i trudno je rozdzielić przy zeskrobaniu. Ich przezroczystość maleje i pod koniec etapu staje się nieprzezroczysta.
U mężczyzn jądra mają bardziej rozszerzoną przednią część, zwężającą się z tyłu. Na Przekrój ich krawędzie nie topią się;
4) dojrzałość: narządy płciowe osiągają prawie maksymalny rozwój (stadium krótkie)
U kobiet jajniki zwykle wypełniają 2/3 jamy brzusznej. Jajka są duże, przezroczyste, łatwo od siebie oddzielane, a po naciśnięciu wypływają.
Mężczyźni mają jądra biały i wypełnione są płynnym mlekiem, a przy przecięciu jądra w poprzek jego krawędzie są zaokrąglone. Po naciśnięciu brzucha uwalniają się krople nasienia, często z krwią;
5) tarło(płyn)
U samic lekki nacisk na brzuch powoduje uwolnienie jaj.
U mężczyzn lekki nacisk na brzuch powoduje uwolnienie plemników;
6)Nokaut: produkty rozrodcze są całkowicie usuwane (krótki etap)
U kobiet jajniki są zwiotczałe, objęte stanem zapalnym i mają ciemnoczerwony kolor. Często pozostaje niewielka ilość jaj.
U mężczyzn jądra są zwiotczałe, ze stanem zapalnym i mają ciemnoczerwony kolor;
6-2) Etap odzyskiwania- gonady regenerują się po tarle i uzyskują elastyczny kształt, ale obszary jajników i jąder w pobliżu otworu moczowo-płciowego pozostają w stanie zapalnym.
Zalety:
Stosowany w warunkach polowych w PBA
Umożliwia jednoznaczną identyfikację dynamiki wewnątrzgatunkowej
Wady:
Subiektywność
Wskaźniki ilościowe:
Współczynnik dojrzałości to stosunek masy gonad do masy ciała ryby,%
Wskaźnik dojrzałości to procent CV gonad, obliczony. w niektórych okresach dojrzałości gonad do max KZ.
54. Płodność ryb: podstawowe pojęcia i metody ich wykrywania.
Płodność zależy od wieku i warunków środowiskowych.
Płodność bezwzględna (indywidualna) - liczba jaj, które samica może złożyć w 1 sezonie tarłowym.
Wraz ze wzrostem masy i rozmiaru ciała wzrasta płodność
Względna płodność indywidualna to liczba jaj na jednostkę masy samicy.
Płodność robocza to liczba jaj pobranych w celu rozrodu od 1 samicy.
Płodność gatunku to liczba jaj składanych przez samicę w ciągu całego jej życia.
Płodność populacji to liczba jaj złożonych przez populację w ciągu 1 sezonu tarłowego.
Metoda określania płodności
Zrobione w 4. etapie dojrzałości.
Przyjmuje się go metodą wagową lub objętościową.
Określ płodność według porcji
Przeanalizuj jajka i wybierz porcje.
55. Cechy określania etapów dojrzałości i płodności u gatunków ryb odbywających tarło porcyjne. Płodność to liczba jaj, które samica może złożyć w ciągu jednego sezonu tarłowego. U ryb składających tarło płodność określa się na podstawie liczby porcji, jeżeli ryba składa tarło w 2-3 porcjach, można to określić metodą wizualną, w przypadku > 3 porcji należy wykonać badania histologiczne. Metody oceny stopnia dojrzałości gonad: 1) histologiczne (wykonuje się skrawki i określa stopień dojrzałości oocytu i plemnika), 2) skala dojrzałości (młoda, przygotowawcza, dojrzewanie, dojrzałość, tarło, wylęganie), 3) ilościowe wskaźniki dojrzałości gonad. masa gonad i masa ciała ryby. Dla jajnika ryb w okresach tarła charakterystyczne są: oocyty nierozwinięte lub oocyty w różnych fazach dojrzałości. Każda porcja może poprzedzać drugą o 2-3 tygodnie. Wielkość porcji ocenia się na podstawie pomiaru średnicy jaj w jajniku w okresie przedtarłowym i tarłowym.
Aby pomyślnie wdrożyć działania związane z hodowlą ryb i rekultywacją, wymagana jest dogłębna wiedza koło życia cenne gatunki ryb i najważniejsze ogniwo - reprodukcja.
Pojęcie hodowla ryb obejmuje: rozwój gonad, tarło, zapłodnienie, rozwój embrionalny i postembrionalny. Rozmnażanie możliwe jest dopiero po osiągnięciu przez ryby dojrzałości płciowej, tj. dojrzewanie ich produktów rozrodczych (u samic, jaj, u samców, plemników).
Dojrzałość płciowa u niektórych gatunków ryb występuje w godz w różnym wieku. Większość karpi, okoni łosoś osiągają dojrzałość płciową w wieku 6-12 lat. U niektórych gatunków ryb okres rozwoju komórek rozrodczych jest opóźniony o ponad długi czas. W ten sposób jesiotr osiąga dojrzałość płciową w wieku 6-12 lat (bieługa - 10-16 lat). Dojrzałość płciowa u samców następuje 1-2 lata wcześniej niż u samic.
Czynniki środowiskowe (przede wszystkim temperatura i warunki żywienia) mają ogromny wpływ na proces dojrzewania produktów rozrodu ryb. Niskie temperatury, a także niewystarczające odżywianie mogą zatrzymać dojrzewanie gonad. Prawidłowe dojrzewanie komórek rozrodczych – oogeneza u kobiet i spermatogeneza u mężczyzn – zachodzi tylko w sprzyjających warunkach środowiskowych. Każda komórka rozrodcza, zanim w końcu dojrzeje, musi przejść przez szereg etapów swojego rozwoju. W tym przypadku wyróżnia się dwa procesy: 1 – okres osiągania dojrzałości płciowej, rozpoczynający się od pojawienia się pierwotnych komórek rozrodczych, a kończący na powstaniu dojrzałych produktów rozrodczych; 2 – okresowe dojrzewanie określonej części produktu rozrodczego w okresie międzytarłowym (po osiągnięciu dojrzałości płciowej). Pierwszy okres jest dłuższy, drugi trwa różnie dla różnych gatunków ryb. W ten sposób karp i leszcz rozmnażają się co roku, ale jesiotry umierają po 3-5 latach, a łosoś pacyficzny umiera po tarle.
Stopień dojrzałości gonad można określić za pomocą skali dojrzałości. W przypadku karpi i okoni istnieją skale SI. Kulaev i V.A. Meyen, dla jesiotra - A.Ya. Nedoshivina, A.V. Lukin i I.N. Molchanova. Z. Sakun i N.A. Butskaya opracowała dwie uniwersalne skale dla wszystkich handlowych grup ryb. Na podstawie tych dwóch skal opracowano jedną uniwersalną skalę dojrzałości gonad kobiet i mężczyzn.
Rozwój żeńskich komórek rozrodczych (oogeneza) składa się z następujących etapów:
Etap I – niedojrzałe młode osobniki. Gonady wyglądają jak grube przezroczyste sznury przylegające do ścian jamy ciała. Reprezentowane są komórki rozrodcze u kobiet oogonia, lub młode oocyty w okresie wzrostu protoplazmatycznego.
Etap II – osobniki dojrzewające lub osobniki z wytworzeniem produktów rozrodczych po tarle. Jajniki są przezroczyste. Wzdłuż nich biegnie duży naczynie krwionośne. Oglądane przez szkło powiększające jajniki są wyraźnie widoczne oocyty okres wzrostu protoplazmy. Poszczególne oocyty zakończyły już wzrost i można je rozróżnić gołym okiem. Wokół oocytów tworzy się warstwa komórek pęcherzykowych wytworzona z nabłonka zarodkowego jajników.
Etap III - gonady są dalekie od dojrzałości, ale są już stosunkowo dobrze rozwinięte. Jajniki zajmują od jednej trzeciej do połowy objętości jamy brzusznej i zawierają małe, nieprzezroczyste oocyty, widoczne gołym okiem, zwykle różne odcienie żółty kolor. Kiedy jajnik pęka, tworzy się kilka grudek. Na tym etapie wzrost oocytów następuje nie tylko z powodu protoplazmy, ale także w wyniku gromadzenia się składników odżywczych w osoczu, reprezentowanych przez granulki żółtka i kropelki tłuszczu. Okres ten nazywa się okres wzrostu troficznego(duży) .
W zależności od pigmentu charakterystycznego dla różnych gatunków ryb, jajniki uzyskują inny odcień. W cytoplazmie oocytów pojawiają się wakuole zawierające substancje o charakterze węglowodanowym. Tworzy się błona oocytu. Najpierw na powierzchni oocytu tworzą się mikrokosmki. U podstawy mikrokosmków tworzy się cienka warstwa jednorodnego, pozbawionego struktury materiału. Wraz z gromadzeniem się wtrąceń żółtka w oocycie powstaje kolejna warstwa, składająca się z wiązek rurowych elementów strukturalnych. Następnie warstwa wewnętrzna przekształca się w jednorodną warstwę zewnętrzną, a obie warstwy tworzą jedną powłokę. W zależności od biologii gatunku i ekologii tarła, zdolności adaptacyjnych podczas filogenezy i innych warunków, skorupa różnych gatunków ryb ma różną budowę. Tak więc u jesiotrów składa się z kilku warstw (złożonej muszli), u niektórych gatunków jest to jedna warstwa.
Podczas badania błony oocytu pod mikroskopem widoczne są promieniste prążki, stąd nazwa strefa radiata.
Oocyt z uformowaną strefą promienistą jest otoczony przez komórki pęcherzykowe, które tworzą błonę pęcherzykową, czyli pęcherzyk. U niektórych gatunków ryb nad strefą promienistą tworzy się kolejna skorupa (galaretka), na przykład u płoci. Niektóre gatunki ryb mają kosmkową skorupę.
Etap IV - gonady osiągnęły lub prawie osiągnęły pełny rozwój. Oocyty są duże i łatwo je od siebie oddzielić. Kolor jajników jest różny u różnych gatunków ryb. Zwykle jest żółty, pomarańczowy, u jesiotra jest szary lub czarny. Komórki rozrodcze są reprezentowane przez oocyty, które zakończyły wzrost trofoplazmatyczny i utworzyły błony i mikropyle. Na etapie 4, a także na etapach 2 i 3 dojrzałości u ryb wielopierścieniowych, jajniki zawierają oogonia i oocyty z okresu wzrostu protoplazmatycznego, które stanowią rezerwę na przyszłe tarło.
Skorupa jaja zawiera mikropyl, dzięki któremu plemniki mogą przedostać się do wnętrza komórki jajowej. Jesiotry mają ich kilka (jest to adaptacja gatunkowa). Jądro oocytu przesuwa się w stronę mikropylu. Jądro i żółtko są polarne. Jądro znajduje się na biegunie zwierzęcym, żółtko na biegunie wegetatywnym. Żółtko łączy się z tłuszczem.
Etap V – osobniki płynne. Jaja swobodnie wypływają z otworu płciowego. Po przejściu do etapu V jaja stają się przezroczyste. Kiedy pęcherzyk pęka, komórka jajowa następnie przedostaje się do jajowodu lub jamy brzusznej, w zależności od budowy jajnika. Po owulacji następuje szybki proces dojrzewania – mejoza.
U jesiotrów jądra jądra rozpuszczają się, a jądro zmniejsza się. Powłoka jądra rozpuszcza się i rozpoczynają się podziały. Następnie oocyty ryb są uwalniane z błony pęcherzykowej.
Etap VI – osobniki rozmnażane. Produkty rozrodcze zostały zmiecione. Jajniki są małe, zwiotczałe. Pozostałe pęcherzyki, a także niezłożone jaja ulegają resorpcji. Po ponownym wchłonięciu pustych pęcherzyków jajniki wchodzą w II, a w niektórych przypadkach III etap dojrzałości.
Rozważana skala etapów dojrzałości gonad może być wykorzystana do analizy ryb z tarłem jednorazowym, u których samice składają tarło tylko raz w roku. Jednakże u niektórych gatunków ryb tarło jest podzielone (wiele karpi, śledzi i okoni). Samice tych ryb składają tarło kilka razy w ciągu roku, a ich oocyty dojrzewają w różnym czasie.
Proces rozwój męskich komórek rozrodczych (spermatogeneza) obejmuje kilka etapów:
Etap I. Przedstawiono męskie komórki rozrodcze spermatogonia. Spermatogonia to pierwotne komórki rozrodcze, które powstają u samców ryb z nabłonka otrzewnej.
Etap II. Jądra wyglądają jak płaskie sznury o szarawym lub biało-różowym kolorze. Komórki płciowe są reprezentowane przez spermatogonie w stanie reprodukcji. Dzielą się kilkukrotnie, zwiększając ich liczbę, z każdej początkowej powstaje pięć (takie grupy nazywane są cystami).
Etap III. Jądra na tym etapie znacznie zwiększają swoją objętość, są gęste i elastyczne. Spermatogonia wchodzi w okres wzrostu i zamienia się w spermatocyty Zamawiam. Następnie zaczynają się dzielić i z każdego spermatocytu pierwszego rzędu powstają dwa spermatocyty drugiego rzędu, a następnie 4 spermatydy mniejszy rozmiar. Powstałe plemniki wchodzą w okres formowania i stopniowo przekształcają się w dojrzałe plemniki.
Etap IV. Jądra na tym etapie są największe i mają mlecznobiały kolor. Na tym etapie spermatogeneza jest zakończona, a kanaliki nasienne zawierają plemniki.
Etap V. Tworzy się płyn nasienny, co prowadzi do upłynnienia masy plemników, powodując ich wyciek.
Etap VI. Rozrodzone osobniki. Jądra są małe i zwiotczałe. Pozostałe plemniki są odsłonięte fagocytoza.
Paragon dojrzali producenci, w którym komórki jajowe i plemniki nadają się do zapłodnienia, jest najważniejszym elementem prac nad sztuczną hodowlą jesiotra.
Wcześniej pozyskiwanie takich ryb było możliwe jedynie w pobliżu naturalnych tarlisk lub bezpośrednio na tarliskach, gdzie trzeba było organizować specjalne połowy. Spośród złowionych ryb tylko niewielka część (nie więcej niż 1-4%) miała dojrzały kawior i plemniki.
Przy tak zawodnym sposobie pozyskiwania dojrzałych produktów organizowanie sztucznej hodowli na dużą skalę stało się niezwykle trudne.
Ekologiczne i fizjologiczne metody stymulacji dojrzewania produktów rozrodczych
Aby przenieść hodowlę jesiotrów na planowe podstawy, konieczne było opanowanie procesu przenoszenia producentów do stanu tarłowego w celu uzyskania dojrzałych jaj i samego plemnika.
Istnieją dwa sposoby rozwiązania tego problemu. Jeden z nich - środowiskowy - został opracowany przez akademika Akademii Nauk AzSSR A. N. Derzhavina. Uważał, że przy hodowli buhajów należy stworzyć warunki środowiskowe odpowiadające naturalnym, w których następuje rozwój potomstwa. Ponieważ w naturze jaja i plemniki dojrzewają podczas tarła ryb pod prąd, A. N. Derzhavin uznał ten czynnik za główny czynnik wpływający na przyspieszenie dojrzewania produktów rozrodczych. Do przetrzymywania i pozyskiwania dojrzałych tarli zalecił stosowanie owalnych klatek o długości 25 m, szerokości 6 m i głębokości do 1,2 m, w których tworzono prąd i symulowano warunki rzeczne (szybkie prądy itp.). Na dnie takich klatek umieszcza się kamyki. Doprowadzenie wody do klatki jest mechaniczne, przepływ wody wynosi 20 l/s. Poprawę cyrkulacji wody osiąga się poprzez zamontowanie w środkowej części klatki na całej jej długości betonowej ściany o długości 19 m. W każdej klatce umieszcza się 50 ryb; osobno kobiety i mężczyźni. Wraz z panującą w klatkach tworzą się sprzyjające warunki temperaturowe i tlenowe. Jednak doświadczenie z takimi klatkami pokazało, że dojrzewa w nich tylko jedna trzecia tarlików, trudno też określić moment, w którym należy sięgnąć po kawior.
Fizjologiczna metoda stymulacji dojrzewania produktów rozrodczych, opracowana przez profesora N.L. Gerbilsky'ego, nie ma tych wad. Polega na wprowadzeniu do mięśni ciała kobiety i mężczyzny acetonowanego preparatu przysadki mózgowej, od których chcą uzyskać dojrzałe komórki jajowe lub nasienie.
Badania wykazały, że w organizmie ryby ważnym regulatorem dojrzewania komórek rozrodczych jest wyrostek mózgowy – przysadka mózgowa, która łączy układ nerwowy organizmu z gonadami. Przysadka mózgowa, gruczoł dokrewny, wytwarza specjalne substancje - hormony, pod wpływem których producenci przechodzą w stan tarła.
Przysadka mózgowa składa się z dwóch części: mózgowej - neurohypofizy i gruczołowej - adenohypofizy. Hormony gonadotropowe produkowane są przez komórki gruczołowe gruczolaka przysadkowego.
Najlepsze rezultaty uzyskuje się łącząc ekologiczne i fizjologiczne metody stymulacji funkcji płciowych hodowców jesiotrów. Kombinację przeprowadza się w następującej kolejności: najpierw hodowcy trzymani są w specjalnych zbiornikach, a następnie wykonuje się zastrzyk przysadki mózgowej.
Osadzanie gospodarstw w celu utrzymania producentów
Producenci trzymani są w specjalnych zbiornikach przeznaczonych do łowienia ryb jigowych. Istnieją dwa główne typy gospodarstw jigowych. Jeden z nich został zaprojektowany przez prof. B. N. Kazansky, drugi - przez hodowców ryb Kura (hodowla klatkowa typu Kurin).
Beregowoe farma jigowa projekty B. N. Kazansky'ego. Farma klatkowa zaprojektowana przez B. N. Kazansky'ego ma ziemne stawy do długoterminowej rezerwy i znajdujące się w ich pobliżu betonowe baseny klatkowe, przeznaczone do krótkotrwałego utrzymania hodowców.
Samice i samce trzymane są oddzielnie.
Staw ziemny składa się z dwóch części: głównej, rozbudowanej, o głębokości do 2,5 m oraz zwężonej, płytszej o głębokości 0,5-1 m. W tej części stawu powstają warunki symulujące podejście do zasięgu tarła. W części rozszerzonej o większej głębokości warunki zbliżone są do warunków zimowisk.
Staw dla samic ma następujące wymiary: długość 130 m (część poszerzona 100 m i zwężona 30 m), szerokość 20-25 m w części poszerzonej i 4-6 m w części zwężonej. Dno rozszerzonej części jest ziemne, a na zwężonym odcinku wyłożone jest drobnymi gładkimi kostkami brukowymi na zubożonym betonie; Kamyczki są rozrzucone na styku poszerzonych i zwężonych części.
Dopływ wody do stawów jest mechaniczny, dopływ wody odbywa się poprzez żelbetową tacę lub rurę. Woda odprowadzana jest poprzez konstrukcję drenażową, która zapewnia zarówno całkowite odwodnienie stawu, jak i możliwość odprowadzania wody o różnym poziomie. Poziom wody reguluje się za pomocą piaskarek. Stały przepływ wody z 30 l/s można zwiększyć do 300 l/s.
Hodowla klatkowa typu Kura. Jest to staw ziemny o wymiarach 75x12 m, podzielony na trzy części za pomocą betonowej konstrukcji przegrodowej, pośrodku której znajduje się otwór do montażu żaluzji.
W pierwszym odcinku o długości 105 m i głębokości 3 m, producenci przetrzymywani są przez długi czas – od 1 do 1,5 miesiąca. Napełnianie wodą trwa 10-12 godzin, a zrzucanie trwa 5-6 godzin.
Kiedy zbliża się temperatura tarła, tarlaki przenoszone są do drugiego obszaru, czyli owalnego betonowego basenu z pionowymi ścianami. W basenie o długości 7 m, szerokości 5 m i głębokości 1 m przeprowadza się wstępne krótkotrwałe przetrzymywanie samic i samców przed wstrzyknięciem (1-3 dni). Przejście z pierwszego do drugiego odcinka odbywa się w formie płynnego wynurzania: sprzęt wędkarski – hamulce służące do odłowu tarlaków, ciągnięte są po specjalnych prowadnicach za pomocą wciągarek elektrycznych sterowanych zdalnie. Druga sekcja jest napełniana wodą w ciągu 30 minut.
W trzecim miejscu producenci są wstrzykiwani i utrzymywani po wstrzyknięciu przysadki mózgowej. Na tym obszarze znajdują się 2 betonowe baseny z pionowymi ścianami. Długość basenu wynosi 5 m, szerokość 3,5, głębokość 1 m. Napełnienie i spuszczenie wody zajmuje 15 minut. Nad basenem znajduje się baldachim. Przenoszenie hodowców z drugiej do trzeciej sekcji, a także ich dostarczanie do działu operacyjnego, w którym pozyskiwany jest kawior, odbywa się za pomocą samobieżnego wciągnika elektrycznego w kołyskach.
Wczesną wiosną z osadnika dopływa cieplejsza woda, co pozwala na zatłaczanie ryb do większego zbiornika wczesne daty. Producenci przebywają w basenach przez 1-3 dni. Dopływ i odpływ wody z basenów jest niezależny. Woda dostarczana jest za pomocą rury (fletu) umieszczonej po drugiej stronie basenu. Strumienie wody z fletu skierowane są w przeciwnych kierunkach. W wyniku tego zaopatrzenia w wodę poprawia się reżim tlenowy.
W basenie zasadzono 50 hodowców bieługi, 80 jesiotra lub jesiotra i 100 jesiotra gwiaździstego. Zużycie wody w basenach wynosi 30 l/s. Trzecia działka ogrodzona jest płotem, wokół którego posadzono drzewa.
Producenci zbiorów
Aby uzyskać więcej efektywne wykorzystanie producentów zajmujących się hodowlą ryb bardzo ważne ma wiedzę na temat wewnątrzgatunkowych grup biologicznych.
Badanie zasobów poszczególnych gatunków ryb umożliwiło firmie Acad. L. S. Berg stwierdził obecność wewnątrzgatunkowych grup biologicznych w niektórych z nich. Dalsze rozwinięcie tego zagadnienia należy do prof. N. L. Gerbilsky.
Doktryna wewnątrzgatunkowych grup biologicznych opiera się na uznaniu faktu wewnątrzgatunkowej różnorodności biologicznej właściwej dla wszystkich gatunków zwierząt i roślin. U ryb jest to związane przede wszystkim z procesem rozmnażania i można je ustalić, znając czas i miejsce tarła, różnice w cyklu płciowym, temperaturę tarła, stan tarlaków w okresie ich wpływania do rzek oraz długość pobytu tarlaków w rzece przed tarłem.
Biologiczna analiza stada jesiotrów pozwala na wybór właściwej lokalizacji wylęgarni ryb, pozwala określić terminy jigowania i przetrzymywania tarli, a także rozwiązać kwestię możliwości uzyskania od nich dojrzałych produktów rozrodczych w dolnym biegu rzeki i podwójne wykorzystanie stawów do odchowu młodych ryb w ciągu jednego sezonu wegetacyjnego. Znając wewnątrzgatunkowe grupy biologiczne, można ustalić harmonogram sezonowy, który pozwala na najbardziej racjonalne wykorzystanie zbiorników i wyposażenia przedsiębiorstw hodowli ryb.
Jako przykład podamy grupy biologiczne jesiotra Kura.
Profesorowie N.L. Gerbilsky i B.N. Kazansky odkryli, że krzyżowanie buhajów jesiotrów z różnych grup biologicznych zwiększa ich żywotność w okresie embrionalnym.
Autor stwierdził, że młode osobniki uzyskane ze skrzyżowania buhajów jesiotrów różnych grup biologicznych przewyższają młode osobniki rodziców należących do tej samej grupy biologicznej pod wieloma ważnymi wskaźnikami hodowli ryb: intensywniej żerują i szybciej rosną, mają wyższy wskaźnik otłuszczenia, wyższą zawartość białka i pierwiastków popiołu.
Pozyskiwanie tarlaków jesiotrów należących do różnych grup biologicznych do celów hodowli ryb odbywa się w różnym czasie.
Tak więc wczesną wiosną jesiotra zbiera się w delcie Wołgi w drugiej połowie kwietnia - na początku maja i wykorzystuje się go do uzyskania dojrzałych produktów płciowych po krótkotrwałej rezerwie w maju. Jesiotra ozimego wybiegu jesiennego zbiera się w październiku, a po długim okresie leżakowania w drugiej połowie kwietnia następnego roku uzyskuje się z niego kawior i nasienie.
- samice w pobliżu owulacji mają ciało szczupłe, natomiast u ryb mniej dojrzałych jest ono bardzo grube i tłuste;
- u dojrzałych ryb szypułka ogonowa (od tylnego brzegu płetwy grzbietowej do początku łopatki ogonowej) ma przekrój owalny, tj. jego wysokość jest znacznie większa niż szerokość, co świadczy o utracie wagi ryby. U mniej dojrzałych ryb szypułka ogonowa jest grubsza i niższa;
- u osobników dojrzałych pysk jest spiczasty na skutek utraty wagi, u ryb mniej dojrzałych pysk i cała głowa są grubsze;
- Robaki dojrzałych ryb są mniej ostre, skóra jest bardziej pokryta gęstym śluzem.
Aby skupić się na tych znakach, musisz mieć duże doświadczenie w pracy z producentami.
A.E. Andronov (1979) opracował metodę selekcji samic jesiotra na podstawie pomiaru jaj. Wśród samic jesiotra gwiaździstego migrujących do rzeki występuje wiele niedojrzałych ryb, w których gonadach znajduje się dużo niskiej jakości małego kawioru, dlatego konieczne jest wybranie samic z największym kawiorem. Jaja mierzy się sondą posiadającą skalę o podziałce 2 mm i znaku zerowego w odległości 31 mm od początku szczeliny o średnicy 3 mm. U samic wybranych do hodowli ryb 15 jaj powinno tworzyć rząd kończący się co najmniej na drugiej podziałce skali sondy.
Drugą opcją wyboru samic jesiotra gwiaździstego jest określenie stopnia polaryzacji (skrajnej pozycji) jądra. Kawior usunięty sondą umieszcza się w płynie Serra (6 części formaldehydu, 3 części alkoholu, 1 część lodu kwas octowy), przemywamy wodą i kroimy maszynką do golenia wzdłuż osi zwierzęco-wegetatywnej.
Położenie jądra w jajach ocenia się pod lupą 7×10 na podstawie odległości jądra od skorupy tyczki zwierzęcej. Samice jesiotra gwiaździstego uważa się za dobre, jeśli ich jądro przesunęło się z pierwotnego położenia na odległość nieprzekraczającą promienia jaja.
Badacz Instytutu Badawczego Rybołówstwa Azov L.V. Badenko opracował metodę selekcji producentów w oparciu o wskaźniki fizjologiczne, która pozwala bardziej obiektywnie ocenić wartość producentów dla celów hodowli ryb. Metoda opiera się na fakcie, że jesiotr podczas migracji tarłowych wpływa do rzek w różny sposób stan fizjologiczny. Wyjaśnia to zarówno nierówna dojrzałość produktów reprodukcyjnych, jak i różne poziomy gromadzenie się w organizmie substancji rezerwowych. Tak więc, według L.F. Golovanenko, należy zarezerwować wyczerpanych hodowców, którzy nie nadają się do uzyskania kawioru i nasienia, a także osobniki, które mają produkty płciowe w IV niepełnym stadium dojrzałości, i można wstrzykiwać ryby w IV stadium dojrzałości bezpośrednio po zbiorach w kopalniach.
Oczywiste jest, jak ważna jest ocena stada lęgowego wybranego do hodowli ryb. Najłatwiej to zrobić poprzez badanie krwi. Okazało się, że najbardziej jednoznaczną odpowiedź na pytanie o jakość producentów dają takie wskaźniki, jak zawartość hemoglobiny i skład białek surowicy. Na ich podstawie L.V. Badenko zaleca wybór producentów.
Na początku tarła samice mają znaczny poziom tłuszczu i białka, mają wysokie tempo metabolizmu i oddychania, dlatego takie ryby należy odłowić w pierwszej kolejności. Zwykle mają poziom tłuszczu, białka, metabolizmu i oddychania charakterystyczny dla ryb składających w pełni dojrzałe jaja.
Preparat sporządza się z połowów niewodów, wybierając producentów o optymalnej masie do pracy (nie więcej niż 15-20 kg dla jesiotra i jesiotra gwiaździstego oraz 100 kg dla bieługi), bez urazów, siniaków itp.
Przy określaniu masy ryb zabrania się ważenia wybranych producentów na skalach dziesiętnych w miejscu odbioru, gdyż ważenie bez wody negatywnie wpływa na stan ryb. Masę ciała należy określić za pomocą specjalnej tabeli, która zawiera dane dotyczące stosunku długości ciała do masy.
Duże znaczenie ma także dobór wieku producentów. Zdaniem A.A. Popowej najlepsze potomstwo rodzą jesiotry przychodzące na tarło po raz drugi i trzeci.
Producenci są przygotowani w taki sposób, aby mieć rezerwę na wypadek odpadów w transporcie i dojrzewaniu: dla bieługi i jesiotra gwiaździstego od 20 do 30%, a dla jesiotra od 10 do 30% masy Łączna przygotowanych producentów.
Producenci wybierani są bezpośrednio z niewodu wyładunkowego. Pojedynczo ostrożnie układa się je na płóciennym noszach i przenosi na mały statek do połowu żywych ryb (mattenka), na który można zebrać nie więcej niż 10 osobników. Matka dostarczana jest do dużego statku z żywymi rybami, którym producenci są transportowani do wylęgarni jesiotrów. W niesamobieżnym slocie na żywe ryby typu Astrachań sadzi się 5 belug lub 10 jesiotrów, taką samą liczbę cierni lub 16 jesiotrów gwiaździstych. Długość szczeliny typu Astrachań wynosi 13 m, szerokość 5 m i głębokość 0,8 m, szybkość ładowania: jeden jesiotr na 1,5-2 m 3, jeden jesiotr na 1 m 3 i jedna bieługa na 5-7 m 3. Aby zapobiec obrażeniom ryb, ramy szczelin są przykryte struganymi deskami.
Producenci dostarczeni do wylęgarni ryb przenoszeni są na molo za pomocą specjalnego dźwigu o udźwigu 500 kg. Ryby transportowane są w płóciennej kołysce wypełnionej wodą, zawieszonej na metalowej rurowej ramie. Od góry przykryty jest płóciennym fartuchem.
Po podniesieniu na pomost kołyska jest natychmiast instalowana na rurowym stojaku z tyłu samochodu lub podwozia samobieżnego i transportowana do stawu. Kołyskę można także przemieszczać elektryczną kolejką jednoszynową. Następnie przez równia pochyła Kołyska wraz z rybą jest opuszczana do stawu. Ryby można również transportować i rozładowywać za pomocą kolejki jednoszynowej i podnośnika towarowego. Przy tej metodzie transportu kołyska z producentami jest zdejmowana z podwozia za pomocą podnośnika, przenoszona nad stawem, a następnie opuszczana. Do wewnątrzzakładowego transportu producentów wykorzystywane są także tory jednoszynowe z wciągnikami elektrycznymi.
Ze stawów tarlaków wyłapują je za pomocą włók (wytężonych narzędzi połowowych) wyposażonych w pływak i obciążniki. Pływak składa się z piankowych pływaków umieszczonych na górze. Do dolnej ramy przymocowane są obciążniki wykonane z wypalanej gliny. Do końców skrzydeł przywiązane są drewniane klocki zwane nagami. Długość przeciągu jest o 40-50% większa niż szerokość stawu, a wysokość o 30-40% większa niż największa głębokość zbiornika.
Ryby łowi się najczęściej w jednym, podłużnym rzucie. Ciągną niewód za brzegi po obu stronach zbiornika. Zatapianie odbywa się na płytkim obszarze przy przodzie stawu. Miejsce tonięcia wzmocnione jest zasypką skalną i żwirową. Do tej sekcji podłączony jest podwieszony tor podnoszący, który ma na celu zmechanizować podnoszenie producentów.
Złapane tarlaki umieszcza się w kołysce lub na noszach i doprowadza do podnośnika, który dostarcza ryby do klatek, gdzie tarlaki są wstrzykiwane.
Po użyciu dragi wiesza się na wieszakach do wyschnięcia.
Przygotowanie przysadki mózgowej
Przysadkę mózgową najlepiej zbierać wiosną, w okresie lęgowym. W tym czasie produkty rozrodcze ryb znajdują się w fazie IV, a maksymalna ilość hormonów gromadzi się w przysadce mózgowej.
Niemożliwe jest pobranie przysadki mózgowej z tarła ryb, ponieważ zawarte w nich wcześniej hormony są całkowicie zużywane w okresie lęgowym. Do odłowu nie można wykorzystać przysadki mózgowej niedojrzałych ryb. Jednocześnie T.I. Faleeva zauważa, że przysadkę mózgową można zbierać jesienią i zimą.
Aby usunąć przysadkę mózgową, otwiera się czaszkę żywej lub świeżej ryby za pomocą stalowej trepany, która jest metalowym prętem wyposażonym w rączkę. Na dolnym końcu pręta zamontowany jest cylinder, który można przesuwać w pionie wzdłuż pręta i zabezpieczać śrubą. U podstawy cylindra znajdują się zaostrzone i rozstawione zęby, które wcinają się w tkankę podczas obrotu trepany. Jego średnica wynosi 30 mm. Aby uzyskać przysadkę mózgową z bieługi, stosuje się duże trefiny o średnicy 35-40 mm.
Trepanę umieszcza się na środku głowy ryby, za oczami. Aby dokładnie zamontować trepanę, cylinder podnosi się do pełnej pojemności, w wyniku czego dolny spiczasty koniec pręta wystaje poza krawędź cylindra. Następnie obróć uchwyt i po wykonaniu kilku obrotów podnieś pręt, aby uniknąć zniszczenia przysadki mózgowej. Następnie trepanę wkręca się całkowicie i usuwa się wycięty czop składający się z kości i chrząstki. W czapce czaszki powstaje otwór, który, jeśli trepan jest prawidłowo zainstalowany, znajduje się powyżej dołu przysadki mózgowej. Do uzyskania przysadki mózgowej wykorzystuje się także elektrotrefinę, czyli wiertarkę elektryczną, która znacznie ułatwia i przyspiesza preparację przysadki mózgowej.
Mózg i płyn są usuwane z jamy czaszki. Na tym kończą się operacje przygotowawcze i można przystąpić do usuwania przysadki mózgowej.
Przysadkę mózgową usuwa się za pomocą używanej w chirurgii łyżki Volkmanna, która ma ostre krawędzie i długą rączkę. W żadnym wypadku nie należy pobierać tkanki gruczołu pęsetą, ponieważ może to spowodować uszkodzenie przysadki mózgowej i sprawić, że nie będzie się nadawał do wstrzyknięcia. Za pomocą łyżki Volkmanna można łatwo usunąć przysadkę mózgową i przenieść ją do naczynia. Usuniętą przysadkę mózgową odtłuszcza się i odwadnia, po czym aceton wlewa się do naczynia z dobrze zamykaną pokrywką (dzbanek). Po usunięciu każdego przysadki mózgowej kombajn umieszcza go w acetonie. Po usunięciu wszystkich przysadek mózgowych umieszcza się je w nowej porcji acetonu na 12 godzin, następnie ponownie opróżnia i wlewa nową porcję, w której odtłuszczanie następuje po 6-8 godzinach. Przysadkę mózgową wyjętą z butelki suszy się na bibule filtracyjnej.
Do leczenia przysadki mózgowej można stosować wyłącznie bezwodny, chemicznie czysty aceton. Objętość acetonu powinna być 10-15 razy większa niż masa zawartych w nim przysadek mózgowych. Ponowne użycie acetonu nasyconego wodą jest niedopuszczalne.
W celu długotrwałego przechowywania wysuszone przysadki mózgowe umieszcza się w plastikowych torebkach i etykietuje.
Wskazane jest wybranie przysadki mózgowej o tej samej masie do oddzielnych worków, aby w warunkach polowych w wylęgarni ryb można było dokładnie obliczyć stosowane dawki.
Pobranie przysadki mózgowej należy przeprowadzić centralnie dla kilku roślin jednocześnie z określeniem aktywności gonadotropowej produkowanego leku na obiektach badawczych.
Scentralizowane zaopatrzenie przez doświadczonych specjalistów pozwala nam zapewnić wysoką jakość przysadki mózgowej i możliwość stosowania optymalnych dawek.
Określanie jakości przysadki mózgowej
Aby określić ilość hormonów znajdujących się w przysadce mózgowej i jakość powstałych leków, przeprowadza się badania biologiczne, które sprowadzają się do wyjaśnienia różnych reakcji narządów zwierząt, które otrzymały zastrzyk badanych leków. Zazwyczaj do testów biologicznych wykorzystuje się bocje i żaby.
Po wstrzyknięciu przysadki mózgowej bochenek zawsze daje wymierną, wyraźną reakcję. Określenie jednostki aktywności przysadki mózgowej ryb odbywa się za pomocą koncepcji jednostki bocji (v.u.) ustalonej przez B.N. Kazansky'ego.
Jednostka Loacha- jest to ilość hormonu gonadotropowego niezbędna do spowodowania, 50-80 godzin po wstrzyknięciu, dojrzewania jaj i owulacji u samic bocianów zimowych w IV stadium dojrzałości o masie 35-45 g przy temperaturze wody 16-18° C w warunkach laboratoryjnych.
W celu określenia aktywności testowego preparatu przysadkowego w jednostkach Loach kilku grupom samic podaje się jednocześnie zastrzyki przysadkowe z różnymi dawkami przysadki mózgowej. Najmniejsza dawka powodująca dojrzewanie odpowiada jednostce bochenka. Wiedząc o tym, można porównać zawartość hormonu gonadotropowego w różnych przysadkach mózgowych.
Wykorzystanie bocji jako obiektu badawczego jest utrudnione ze względu na ograniczone rozmieszczenie ich w naturalnych zbiornikach wodnych.
Bardziej przystępnym obiektem są żaby. Można je łatwo pozyskać w wymaganej ilości o każdej porze roku. Pozytywną reakcją u żab jest pojawienie się ruchliwych plemników w kloace po wstrzyknięciu zawiesiny przysadki mózgowej do grzbietowych worków limfatycznych. Reakcja ta zachodzi bardzo szybko - po 40-50 minutach. To druga zaleta pracy z żabami w porównaniu z bocianami.
Samce żab odławia się późną jesienią w miejscach, w których gromadzą się w celu zimowania. Trzymane są w wodzie o temperaturze 1,5°C, przy małym przepływie i przy słabym oświetleniu.
Testowanie leku należy przeprowadzać co roku o tej samej porze. Tak więc w delcie Wołgi robią to w pierwszej połowie marca.
Żaby wyprowadza się ze stanu zimowego poprzez powolne podnoszenie temperatury wody i doprowadzanie jej po tygodniu do 16-18°C. Najlepsze wyniki badania daje temperatura 18-23°C.
Kontrolę przeprowadza się w następujący sposób. Najpierw wybiera się partie po 8-10 przysadek mózgowych, różniących się kolorem i wielkością. Następnie waży się je na wadze analitycznej z dokładnością do 0,1 mg. Odważony preparat uciera się w moździerzu, stopniowo nawilżając, aż do uzyskania jednorodnej kremowej konsystencji. Następnie do preparatu dodaje się roztwór soli fizjologicznej i zawiesina jest gotowa do wstrzyknięcia.
Wstrzyknięcie przeprowadza się jednocześnie u 5 żab. W sumie testuje się 3 grupy żab. Każdej grupie wstrzykuje się określoną dawkę: 0,2; 0,3 i 0,4 mg suchego preparatu przysadki mózgowej.
Wskaźnikiem aktywności biologicznej preparatu przysadki mózgowej jest minimalna dawka wagowa, która powoduje reakcję plemników u ponad połowy wstrzykniętych żab. Aktywność biologiczną leku oblicza się, dzieląc jednostkę przez wskaźnik wagowy minimalnej skutecznej dawki.
Jedna jednostka żab(tj.) to aktywność minimalnej dawki wagowej leku, która powoduje spermację u samca żaby.
Acetonowany preparat przysadki mózgowej powinien charakteryzować się standardową, znaną wcześniej aktywnością, która wynosi 3,3 jednostki żabiej.
Stosowanie leku pozwoli na bardziej ekonomiczne wykorzystanie pobranego przysadki mózgowej. Ponadto w przypadkach, gdy po wstrzyknięciu przysadki mózgowej nie obserwuje się dojrzewania producentów, ułatwiona jest analiza przyczyn tego zjawiska.
Należy także pamiętać, że dawkę podawanego leku na jednostkę masy producentów należy obliczyć z uwzględnieniem aktywności biologicznej każdej partii przysadki mózgowej.
Oprócz powyższej metody oznaczania aktywności acetonowanej przysadki mózgowej istnieje kilka innych metod takiego badania. W szczególności B.F. Goncharov zaproponował zastosowanie systemu dojrzewania jaj poza organizmem w celu określenia jakości przysadki mózgowej. Kontrolę przeprowadza się w następujący sposób. Próbkę kawioru pobiera się sondą i umieszcza w roztworze fizjologicznym zawierającym 0,1% roztwór krystalicznej albuminy. Dodaje się tam również zawiesinę przysadki mózgowej. Jeśli samica jest przygotowana do dojrzewania, wówczas pęcherzyk embrionalny rozpuszcza się.
Zaletami proponowanej metody jest czułość, możliwość uzyskania dużego materiału cyfrowego oraz możliwość wykorzystania jej bezpośrednio w wylęgarniach ryb w sezonie pracy z producentami.
W przypadku tej metody dawkę wstrzykniętego przysadki mózgowej oblicza się w miligramach acetonowanego przysadki mózgowej na 1 kg masy producenta lub w miligramach na mężczyznę lub kobietę.
Prawidłowe dawkowanie w dużej mierze determinuje jakość powstałych produktów seksualnych. Jeżeli dawka będzie niewystarczająca, nie nastąpi dojrzewanie hodowców. Ze zwiększoną dawką lek hormonalny jakość komórek jajowych lub nasienia spada.
W niższych temperaturach (w zakresie temperatury tarła) do dojrzewania tarlaków wymagane są większe dawki leku, w temperaturach zbliżonych do Górna granica temperatury tarła, ilość leku hormonalnego maleje. Dojrzałym mężczyznom w porównaniu z kobietami należy podawać mniej leków hormonalnych.
Wylęgarnie jesiotrów otrzymują acetonowane przysadki mózgowe o określonej aktywności gonadotropowej. Jednak nie zawsze pozostaje ona stała. Kiedy przysadka mózgowa jest przechowywana przez ponad rok, jej aktywność gonadotropowa maleje. Proces pogarszania się jakości przysadki mózgowej zostaje spowolniony, gdy przechowuje się ją w hermetycznie zamkniętym pojemniku, w suchym pomieszczeniu, w niskiej temperaturze.
Zastrzyk przysadki mózgowej
Wysuszony przysadkę mózgową rozciera się tłuczkiem na proszek w czystym moździerzu szklanym lub porcelanowym, następnie odważa się wymaganą dawkę na wadze analitycznej lub skrętnej dla każdej partii nastrzykiwanych producentów oddzielnie dla samic i samców.
Odważoną porcję dodaje się do roztworu fizjologicznego (6,5 g chemicznie czystej soli kuchennej rozpuszczonej w 1 litrze wody destylowanej) i jeszcze trochę mieli. Następnie do tej masy dodaje się kolejną porcję roztworu fizjologicznego w takiej ilości, aby na jednego producenta przypadało 2 cm3 zawiesiny. Następnie dokładnie wstrząsa się kilkakrotnie za pomocą strzykawki i przenosi do butelki z szeroką szyjką i szlifowanym korkiem.
Przed rozpoczęciem wstrzykiwania zawartość butelki należy kilkakrotnie dokładnie wymieszać. Zawiesinę wstrzykuje się w mięśnie pleców za pomocą strzykawki. Po wstrzyknięciu igłę należy ostrożnie usunąć. Miejsce nakłucia skóry uciska się palcem, a następnie delikatnie masuje. Należy to zrobić, aby uniknąć wycieku wstrzykniętego leku.
Gdy temperatura wody jest o 2-3°C niższa od temperatury tarła, dawkę przysadki mózgowej zwiększa się o 30-50%.
Podają zastrzyki przysadkowe pozytywne rezultaty dopiero po ukończeniu czwartego etapu dojrzałości produktów reprodukcyjnych u producentów. Wskaźnikiem tego stanu komórek jajowych jest przemieszczenie ich istniejących jąder w stronę kanału (mikropylu), przez który plemnik przedostaje się do wnętrza komórki jajowej.
Czwarty etap u mężczyzn charakteryzuje się zakończeniem procesu tworzenia plemników. U takich samców przeważają dojrzałe, w pełni uformowane plemniki.
Dobre rezultaty uzyskuje się już po jednorazowym wstrzyknięciu acetonowanego leku. Czasami jednak nie są one wystarczająco skuteczne. Taka sytuacja ma miejsce, gdy stan ogólny producentów ulega pogorszeniu lub rozwój jaj nie jest całkowicie zakończony. W takiej sytuacji czasami wskazane jest wykonanie wielokrotnych wstrzyknięć małych dawek leku. Należy jednak zawsze pamiętać, że zwiększone dawki preparatu przysadki mózgowej w porównaniu do dawek potwierdzonych naukowo prowadzą do obniżenia jakości powstałych dojrzałych komórek rozrodczych. Wyjaśnia to fakt, że acetonowany proszek przysadki mózgowej zawiera również hormony, które nie są bezpośrednio potrzebne do dojrzewania komórek rozrodczych. W rezultacie, skutki uboczne ciało wchodzi w stan dużego napięcia (stresu).
Sukces zastrzyków przysadkowych zależy w dużej mierze od sposobu utrzymania hodowców. Na wszystkich etapach tej operacji – przed, w trakcie i po wprowadzeniu preparatu przysadki mózgowej do organizmu ryby – z samicami i samcami należy obchodzić się bardzo ostrożnie, aby zapobiec zranieniu. W zbiornikach przeznaczonych dla hodowców musi panować dobry reżim tlenowy, samice i samce należy trzymać oddzielnie. Przed iniekcją przenosi się je do małych betonowych basenów lub klatek, w których powstają optymalne warunki w celu zapewnienia dojrzewania produktów rozrodczych po wprowadzeniu do organizmu leku hormonalnego.
Określanie czasu dojrzewania producentów
Po wprowadzeniu przysadki mózgowej ryby rozpoczynają okres dojrzewania (do uzyskania dojrzałych jaj), którego czas trwania zależy od temperatury wody i stanu początkowego samic.
A. S. Ginzburg i T. A. Detlaf ustalili, że przy tej samej średniej temperaturze okres dojrzewania jest zawsze znacznie krótszy niż okres rozwoju embrionalnego (4-6 razy). Wynika z tego, że wraz ze wzrostem lub spadkiem temperatury odpowiednio zmienia się czas trwania okresów dojrzewania i rozwoju embrionalnego. Identyfikacja takiego wzorca umożliwiła A. S. Ginzburgowi i T. A. Detlaffowi skonstruowanie wykresów prawdopodobnych czasów dojrzewania samic jesiotra w różnych temperaturach w zależności od czasu trwania ich rozwoju embrionalnego.
Wykresy przedstawiają krzywe wskazujące przewidywany czas osiągnięcia dojrzałości po wstrzyknięciu przysadki mózgowej. Korzystając z wykresów, można również określić czas oglądania samic i pobierania próbek, obliczając najpierw średnią temperaturę w okresie dojrzewania.
Obliczenia dokonuje się w następujący sposób. O godzinie 19:00 w wigilię dnia odbioru jaj i o godzinie 7:00 rano w dniu odbioru jaj obliczana jest średnia temperatura, począwszy od chwili wstrzyknięcia tarlaków. Potem dalej pozioma oś znajdź punkt odpowiadający średniej temperaturze w okresie dojrzewania i przywróć z niego prostopadłą, aż przetnie się z krzywymi. Punkt przecięcia z krzywą pokazuje, po ilu godzinach dojrzewają pierwsze samice. Otrzymaną liczbę godzin dodaje się do czasu wstrzyknięcia i określa się czas rozpoczęcia oglądania samic. Punkt przecięcia z krzywą pozwala w ten sam sposób określić moment dojrzewania wielu samic.
Korzystając z tego harmonogramu, można określić czas wstrzyknięcia zawiesiny przysadki mózgowej samicom jesiotra w celu uzyskania kawioru w czasie dogodnym do pracy. Dzięki temu upraszcza się pracę z producentami, zmniejsza się liczba niezbędnych wizyt samic, poprawia się jakość kawioru i zmniejszają się straty powstałe w wyniku jego przejrzałości lub niedojrzałości.
Obliczając wymagany wskaźnik, najpierw określ średnią temperaturę na dzień przed wstrzyknięciem. Następnie na poziomej osi wykresu dojrzewania kobiet znajduje się punkt odpowiadający tej temperaturze i przywracana jest z niego prostopadła, aż przetnie się z krzywą. Z punktu przecięcia prostopadłą obniża się na oś pionową i na tej podstawie określa się liczbę godzin, jakie upłynną w danej średniej temperaturze od wstrzyknięcia do dojrzewania pierwszych samic. Obliczoną w ten sposób liczbę godzin odejmuje się od godziny rozpoczęcia dnia roboczego i uzyskuje się godzinę, w której należy zaszczepić samice.
Metodę określania stopnia dojrzałości gonad żeńskich bez otwierania ryby zaproponował także V.Z. Trusov. Metoda ta sprowadza się do pobrania kilku jaj z jajnika kobiety za pomocą sondy. Przenosi się je pęsetą do probówki z formaldehydem. Probówki przenosi się do pomieszczenia, w którym zainstalowany jest mikrotom zamrażający. Jaja układa się na stole w taki sposób, aby sekcje maszynki do golenia mikrotomu przechodziły przez bieguny zwierzęce i wegetatywne. Następnie jaja zalewa się wodą z pipety do oczu, po czym stół przykrywa się metalową nakrętką i skrawki zamraża się dodając dwutlenek węgla z balonu.
Skrawki wykonuje się do momentu pojawienia się rdzenia wyraźnie widocznego gołym okiem lub pod lupą. Jeśli leży blisko błon, wówczas stan gonady żeńskiej znajduje się w IV fazie dojrzałości.
Metoda określania stopnia dojrzałości gonad żeńskich zaproponowana przez V.Z. Trusova jest stosunkowo prosta, niezawodna i zajmuje niewiele czasu: analizę jednej próbki można przeprowadzić w ciągu 5-8 minut.
Dojrzewanie samic jest również monitorowane poprzez bezpośrednią obserwację. Kontrola nasila się w ciągu ostatnich sześciu godzin – najbardziej prawdopodobnego okresu dojrzewania w danej temperaturze.
Jeszcze prostszą, ekspresową metodę określania dojrzałości gonad u hodowców jesiotrów opracował prof. B. N. Kazansky, Yu. A. Feklov, S. B. Podushka i A. N. Molodtsov. Istota metody polega na tym, że za pomocą sondy z tylnej części jajnika pobiera się próbkę kawioru, którą wprowadza się do jamy ciała pod kątem 30°, co pozwala uniknąć kontaktu z ważnymi narządami. Bagnet posiada końcówkę wypełnioną jajami oraz pręt umożliwiający jego opróżnienie.
Całkowita długość sondy wynosi 125 mm, końcówka 65 mm, w tym część zaostrzona 20 mm. Zewnętrzna średnica pręta wynosi 4,5 mm. Sonda kończy się uchwytem umieszczonym prostopadle do pręta. Aby określić stopień ukończenia czwartego etapu dojrzałości, jaja wyekstrahowane sondą gotuje się przez 2 minuty. Stwardniałe jaja są cięte żyletką wzdłuż osi od słupa zwierzęcego do słupa wegetatywnego. Skrawki ogląda się pod lupą lub przez lornetkę. Stopień polaryzacji jaja zależy od położenia jądra względem bieguna zwierzęcia. Wskaźnik polaryzacji wyznacza się ze wzoru zaproponowanego przez Yu.A. Feklova: l = A/B, gdzie l jest współczynnikiem polaryzacji; A to odległość od rdzenia do powłoki; B to największa odległość wzdłuż osi od zwierzęcia do bieguna wegetatywnego.
Im niższa wartość l, tym bardziej spolaryzowane jest jajo i tym pełniejszy jest IV etap dojrzałości gonad. Największą polaryzację oocytu obserwuje się przy l = l/30: l/40.
Jeśli brzuch samicy po dotknięciu okaże się bardziej miękki niż przed wstrzyknięciem, oznacza to możliwe dojrzewanie jaj u tego osobnika. Aby się o tym przekonać, należy pod samicę podłożyć nosze do ryb z wodą, podnieść je i ustawić na kozłach. W tym czasie ryba wykonuje gwałtowne ruchy, a jeśli jaja są dojrzałe, można zobaczyć jaja wypuszczone na nosze. Gdy samica się uspokoi, należy ją przewrócić na bok i dotknąć jej brzucha. U osoby dojrzałej po masowaniu tylnej części brzucha kawior wypływa swobodnie strumieniem.
Zatem, jak zauważają A. S. Ginzburg i T. A. Detlaf, wskaźnikami otwierania się samic są miękki odwłok, jaja wyrzucane silnym strumieniem i tonące ściana jamy brzusznej kiedy kobieta wstaje.
Konieczne jest natychmiastowe pozyskanie jaj od w pełni dojrzałej samicy.
Uzyskanie dojrzałego kawioru
Prace nad uzyskaniem dojrzałych produktów rozrodczych, obejmujące zbiór, zapłodnienie i mycie jaj, prowadzone są w dział operacyjny, który zwykle znajduje się w wylęgarni. Posiada sprzęt do pozyskiwania produktów rozrodczych taki jak wyciągarka, zacisk i lodówka (KX-6B), w której przechowywane są producenci bez kawioru i nasienia (kawior i nasienie są pozyskiwane przed dostarczeniem do punktu skupu) ). Na dziale operacyjnym znajdują się stoły produkcyjne o wymiarach 126x84x90 cm typu SPSM-4.
Dojrzałą samicę ogłusza się mocnym uderzeniem w nos drewnianym młotkiem, po czym wykrwawia się ją do sucha poprzez przecięcie tętnicy ogonowej lub skrzelowej, przemywa wodą i suszy. Aby zapobiec przedostawaniu się krwi do misy z kawiorem, miejsce nacięcia zawiązuje się bandażem. Gotową do otwarcia rybę podnosi się za głowę przez poprzeczkę lub blok i zabezpiecza. Brzuch nacina się od dołu do góry, od otworu płciowego na odległość 15-20 cm, nacięcie wykonuje się płytko i lekko z boku linii środkowej. Aby uniknąć ewentualnej utraty jaj, ogon samicy trzyma się nad miednicą. Część dojrzałego kawioru swobodnie spływa jego krawędzią do basenu. Następnie odwłok przycina się do płetw piersiowych, a pozostałe, swobodnie oddzielone jaja przenosi się do miednicy. Do zapłodnienia można również wykorzystać łagodne jaja znajdujące się w jajowodach.
Ilość uzyskanych jaj zależy od wagi samicy.
Jaja od różnych samic nie są mieszane. Wszystkie operacje z kawiorem przeprowadzane są z zachowaniem szczególnej ostrożności. Kawior można zbierać wyłącznie w misach z nienaruszoną emalią. W misce o pojemności 12-15 litrów umieszcza się nie więcej niż 2 kg kawioru.
Zapłodnione są wyłącznie pełnoprawne, dojrzałe jaja, które muszą być identyfikowalne.
Niedojrzałe jaja różnią się od dojrzałych tym, że mają ten sam kolor we wszystkich obszarach. Dojrzałe jaja bardzo powoli odbarwiają się roztwór wodny błękit metylenowy. Rozwiązanie to w ogóle nie odbarwia jaj niedojrzałych, natomiast jaja przejrzałe odbarwiają się znacznie szybciej niż dojrzałe. Ta metoda określania jakości hodowlanej kawioru z jesiotra została opracowana przez M. F. Verniduba, profesora nadzwyczajnego Leningradzkiego Uniwersytetu Państwowego. Sprowadza się to do następującej procedury: 2 cm 3 kawioru (bez płynu wnękowego) umieszcza się w butelce lub szczelnie zamkniętej probówce wypełnionej 10 cm 3 świeżo przygotowanego roztworu błękitu metylenowego (jedna kropla 0,05% wodnego roztworu farba na 10 cm 3 wody), kilka razy Wstrząśnij raz i uwzględnij czas, w którym roztwór odbarwi się.
W niektórych przypadkach odbarwienie nie następuje w zwykłym czasie dla kawioru tej jakości.
Określanie gotowości jaj do zapłodnienia
L. T. Gorbaczowa, pracownica Instytutu Badawczego Rybołówstwa Azow, zaproponowała ocenę gotowości jaj do zapłodnienia w fabryce na podstawie szybkości, z jaką skorupki jaj stają się lepkie po zapłodnieniu.
Aby określić, kiedy przystąpić do inseminacji jaj, które zostały już usunięte z jamy ciała samicy, pobiera się 100-150 jaj, inseminuje plemnikiem i określa czas, w którym jaja znajdujące się w próbce przylegają do szalki Petriego. Następnie, według specjalnego harmonogramu, ustala się termin, w którym należy dokonać inseminacji wszystkich jaj. W przypadku kawioru z jesiotra za najlepszy stan do zapłodnienia uważa się taki, w którym co najmniej 90–95% wszystkich zapłodnionych jaj skleja się w ciągu 9–16 minut; w przypadku kawioru sevruga stan ten odpowiada czasowi 6-10 minut. Taki kawior rozwija się normalnie.
Przejrzały kawior z jesiotra zaczyna się kleić po 4-6 minutach, a jesiotr gwiaździsty - po 2-4 minutach. Takie jaja powodują zwiększoną śmiertelność w okresie inkubacji.
Do zapłodnienia wykorzystuje się wyłącznie jaja Wysoka jakość, których wskaźnikami są:
- obecność na biegunie embrionalnym plamki o innym kolorze niż druga połowa jaja;
- jaja o regularnym okrągłym kształcie i jednakowej wielkości oraz zabarwione blastomery powstałe po pojawieniu się dwóch bruzd bruzdkowych;
- pojawienie się po 6-12 minutach u jesiotra i po 5-10 minutach u jesiotra gwiaździstego wąska szczelina pomiędzy powłoka zewnętrzna oraz jaja z próbki jaja szybko wypłukane z płynu z jamy ustnej (w jajach przejrzałych proces ten rozpoczyna się wcześniej, w jajach niedojrzałych - później);
- pewna masa jaj; 1 g dojrzałego kawioru bieługi powinien zawierać 35-40 jaj, jesiotr - 45-50 jaj, jesiotr gwiaździsty - 75-90 jaj.
Jeśli znajdziesz błąd, zaznacz fragment tekstu i kliknij Ctrl+Enter.
EMBRIOLOGIA
Wykład 7
Komórki płciowe u ryb powstają w gonadach – gruczołach płciowych. Zgodnie ze współczesnymi koncepcjami u ryb pod koniec gastrulacji oddziela się zaczątek pierwotnych komórek rozrodczych – gonocyty. Ich źródłem jest pierwotna endomesoderma, a peryblast stanowi tymczasowe schronienie przed rozpoczęciem migracji do gonad. Jest możliwe, że pierwotne komórki rozrodcze są obecne w gonadach dorosłych ryb.
Proces rozwoju żeńskich komórek rozrodczych nazywa się oogenezą. Gonocyty przemieszczają się do zaczątków żeńskiej gonady i następuje w niej cały dalszy rozwój żeńskich komórek rozrodczych. Struktura oogenezy jest zasadniczo taka sama u wszystkich zwierząt. Po dotarciu do jajnika gonocyty przekształcają się w oogonię.
Oogonia to niedojrzała komórka rozrodcza zdolna do mitozy. Oogonia przeprowadza pierwszy okres oogenezy - okres reprodukcji. W tym okresie oogonia dzieli się mitotycznie. Liczba podziałów jest zależna od gatunku. U ryb i płazów częstotliwość podziałów mitotycznych oogonii jest związana z rozmnażaniem sezonowym i powtarza się przez całe życie.
Kolejnym okresem oogenezy jest okres wzrostu. Komórki płciowe w tym okresie nazywane są oocytami pierwszego rzędu. Tracą zdolność do podziału mitotycznego i wchodzą w profazę I mejozy. W tym okresie następuje wzrost komórek rozrodczych.
Istnieją małe i duże etapy wzrostu. Głównym procesem okresu wielkiego wzrostu jest powstawanie żółtka (witelogeneza, witellus - żółtko).
W okresie małego wzrostu (prewitellogeneza, wzrost cytoplazmatyczny) objętości jądra i cytoplazmy zwiększają się proporcjonalnie i nieistotnie. W tym przypadku relacje jądrowo-cytoplazmatyczne nie są zakłócane. W okresie dużego wzrostu (witellogeneza) synteza i wnikanie inkluzji do cytoplazmy ulega znacznej intensyfikacji, co prowadzi do gromadzenia się żółtka. Zmniejsza się stosunek jądrowo-cytoplazmatyczny. Często jajo w tym okresie znacznie się zwiększa, a jego rozmiar wzrasta dziesiątki razy (ludzie), setki tysięcy razy (żaby, muszki owocowe) lub więcej (rekiny i ptaki).
Wyróżnia się następujące rodzaje odżywiania komórek jajowych:
Typ fagocytarny - występuje w komórkach rozrodczych zwierząt, które nie mają gonad (gąbki, koelenteraty). Dzięki fagocytarnej metodzie witelogenezy oocyty poruszając się w przestrzeni międzykomórkowej są w stanie fagocytować komórki somatyczne organizmu.
Typ samotny - spotykany w kolonialnych polipach hydroidowych, szkarłupniach, robakach, owadach bezskrzydłych, lancetach. W przypadku samotnego sposobu odżywiania oocyt otrzymuje składniki z płynu celomicznego i gonady. Białka żółtka są syntetyzowane w retikulum endoplazmatycznym, a tworzenie granulek żółtka następuje w aparacie Golgiego.
Typ pokarmowy - przeprowadzany za pomocą komórek pomocniczych; dzieli się na odżywcze i pęcherzykowe.
Odżywczy sposób żywienia występuje u robaków i stawonogów. W nich oocyt w jajniku jest otoczony trofocytami (komórkami pielęgnującymi), z którymi jest połączony mostkami cytoplazmatycznymi. Komórka, która wchodzi w kontakt z dużą liczbą komórek siostrzanych (komórek pielęgniarskich), staje się oocytem. U większości zwierząt występuje pęcherzykowy sposób żywienia. Komórkami pomocniczymi w tej metodzie żywienia są komórki gomatyczne w jajniku. Pęcherzyk, czyli oocyt wraz z pomocniczymi komórkami pęcherzykowymi wchodzi w oogenezę. Większość żółtka powstaje w wyniku przyjmowania substancji z zewnątrz, a oocyty z egzogenną syntezą żółtka rosną z dużą prędkością. W strefie powierzchniowej oocytu pojawia się wiele pęcherzyków pinocytarnych zawierających witellogeninę, prekursor białek żółtka pochodzących z krwi.
Witellogeniny u różnych zwierząt są syntetyzowane w różnych tkankach somatycznych i w procesie ewolucji stopniowo skupiają się w ściśle określonym narządzie. U kręgowców witellogenina jest wytwarzana przez wątrobę samic. Witellogenina jest syntetyzowana w komórkach wątroby i podlega kontroli hormonalnej.
Aby rozpocząć proces rozwoju zarodka od momentu zapłodnienia komórki jajowej, w samym jaju dokonuje się pewnych przygotowań do tego wydarzenia. Jądro jaja musi zostać doprowadzone do odpowiedniego stanu, aby złączyć się z jądrem plemnika; w tym przypadku część materiału chromosomalnego jest usuwana z jaja, zamieniając się w małe ciała polarne (proces ten zwykle nie kończy się do czasu zapłodnienia, ale zostaje tymczasowo zawieszony). Co więcej, zawartość cytoplazmatyczna jaja staje się spokojna wysoki poziom organizacja; wydaje się, że do tego czasu charakter jego przyszłej symetrii został w dużej mierze zdeterminowany, chociaż dalsze wydarzenia mogą ją zmodyfikować. Ilość żółtka zawartego w jajku jest bardzo zróżnicowana; służy jako główny czynnik określający wielkość jaja i rodzaj zmiażdżenia. U niektórych zwierząt, zwłaszcza lancetowatych i ludzi, jaja zawierają niewielką ilość żółtka. Takie jaja można nazwać oligolecitalami. Drugi rodzaj jaja jest nieco większy i zawiera umiarkowaną ilość żółtka; nazywane są mezolecytalami. Typowe jaja mezolecytalne obejmują jaja żab; obejmują one również jaja płazów ogoniastych, dwudysznych, promieniopłetwych i minogów.
Jaja mezocytalne są tak powszechne wśród prymitywnych form wodnych, że prawdopodobnie były charakterystyczne dla kręgowców przodków. Z jednej strony rekiny i płaszczki, a gady i ptaki z drugiej strony mają duże jaja; nazywane są polilecitalnymi, ponieważ większość komórki zajmuje żółtko, a cytoplazma, która jest stosunkowo mała, jest skupiona na jednym biegunie.
Jaja są również klasyfikowane na podstawie rozmieszczenia w nich żółtka. W niektórych jajach, głównie oligolecytalnych, żółtko jest rozmieszczone dość równomiernie w całej komórce; takie jaja nazywane są izoletytalnymi. W jajach mezo- i polilecitalnych żółtko koncentruje się w większości przypadków w połowie jaja; dla jaj pływających w wodzie - w dolnej połowie. Takie jaja nazywane są telolecitalami. U współczesnych ryb kostnych jaja są również bardzo bogate w żółtko, ale ich wielkość jest różna.
Koncentracja żółtka na jednej półkuli wyraźnie wskazuje na obecność w jajku określonej organizacji, czyli polaryzacji: na jego górnym końcu znajduje się biegun zwierzęcy, a na dolnym - wegetatywny; Górna połowa jaja jest wypełniona stosunkowo przezroczystą cytoplazmą, a dolna połowa jest wypełniona żółtkiem.
Jaja ryb, podobnie jak jaja kręgowców, są niezwykle zróżnicowane pod względem wielkości, z reguły są to komórki kuliste, zawierające oprócz jądra i pewnej ilości przezroczystej cytoplazmy żółtko, które służy jako pokarm dla rozwijającego się zarodka. Ikra rybna jest zwykle kulista, choć zdarzają się też inne kształty. Struktura jaj jest cecha charakterystyczna nie tylko dla rodzaju, rodziny, ale także dla większych kategorii.
Ikra rybna różni się nie tylko kształtem, ale także wielkością, kolorem, obecnością lub brakiem kropelek tłuszczu oraz strukturą skorupy. Rozmiar jaj jest taki sam jak innych cechy morfologiczne, jest stałą cechą gatunku. Duże ryby składają jaja o większej średnicy niż małe, ale amplituda wahań wielkości jaj pozostaje stała dla gatunku nawet w różnych zbiornikach wodnych, chociaż ich średnie wartości mogą zmieniać się w tę czy inną stronę.
Wielkość jaj zależy od zawartości w nich składnika odżywczego - żółtka i różni się znacznie (w mm): szprot - 0,8-1,05, karp - 1,4-1,5, amur - 2,0-2,5, jesiotr rosyjski - 3,0-3,5 , łosoś – 5,0-6,0, łosoś kumpel – 6,5-9,1, rekin polarny – 80 (bez kapsuły), rekin wielorybi – 670 (długość z kapsułką).
Spośród licznych ryb kostnych najmniejsze jaja są charakterystyczne dla flądry, największe dla łososia, zwłaszcza łososia kumpelskiego. Duża ilość żółtka w jajach łososia, w przeciwieństwie do innych ryb, zapewnia go więcej długi okres rozwój, pojawienie się większych larw zdolnych do zjadania większych organizmów pokarmowych w pierwszym etapie aktywnego żerowania. Największe jaja obserwuje się u ryb chrzęstnych. U niektórych z nich rozwój zarodków (katran) trwa prawie 2 lata.
Kolor jaj jest specyficzny dla każdego gatunku. U sielawy są żółte, u łososi pomarańczowe, u szczupaków ciemnoszare, u karpi zielonkawe, u zielonych szmaragdowo-niebieskie, różowe i fioletowe. Żółtawe i czerwonawe odcienie wynikają z obecności pigmentów oddechowych - karotenoidów. Kawior rozwijający się w mniej sprzyjających warunkach warunki tlenowe, zazwyczaj intensywniej zabarwione. Spośród łososiowatych łosoś sockeye ma najjaśniejszy karmazynowo-czerwony kawior, rozwijający się w wodzie stosunkowo ubogiej w tlen. Jaja pelagiczne, które rozwijają się przy wystarczającej ilości tlenu, są słabo zabarwione.
Jaja wielu ryb zawierają jedną lub więcej kropli tłuszczu, które wraz z innymi metodami, takimi jak pojenie, zapewniają jajom pływalność. Jaja są pokryte na zewnątrz skorupami, które mogą być pierwotne, wtórne i trzeciorzędowe.
Podstawowa - witelinowa lub promienista membrana, utworzona przez samo jajo, przenika przez liczne pory, przez które pokarm dostaje się do jaja. składniki odżywcze podczas jego rozwoju w jajniku. Ta skorupa jest dość mocna, a u jesiotra jest dwuwarstwowa.
Nad skorupą pierwotną większość ryb rozwija skorupę wtórną, galaretowatą, lepką, z różnymi wypustkami służącymi do mocowania jaj do podłoża.
Na zwierzęcym biegunie obu błon znajduje się specjalny kanał, mikropyl, przez który plemnik przedostaje się do komórki jajowej. Teleosts mają jeden kanał, jesiotry mogą mieć kilka. Istnieją również błony trzeciorzędowe - albuminowe i rogowe. Rogówka rozwija się u ryb chrzęstnych i śluzic, podczas gdy błona białkowa rozwija się tylko u ryb chrzęstnych. Rogówka ryb chrzęstnych jest znacznie większa niż samo jajo, nie odpowiada jej kształtem, jest spłaszczona i lekko ściska jajo. Często wychodzą z niego zrogowaciałe nici, za pomocą których jajo przyczepia się do roślin wodnych. U gatunków jajożyworodnych i żyworodnych rogówka jest bardzo cienka i zanika wkrótce po rozpoczęciu rozwoju.
Partenogeneza. Rozwój komórki jajowej jest możliwy bez udziału plemnika i w tym przypadku nazywa się to partenogenezą (od greckiego „partenoza” – dziewica, „geneza” – pojawienie się).
Zdarzają się przypadki, gdy organizmy rozwijają się normalnie ze złożonych, niezapłodnionych jaj.
Kiedy mówią o partenogenezie, mają na myśli rozwój oparty na przedjądrze żeńskim. Jednak w niektórych przypadkach możliwy jest rozwój w oparciu o przedjądro męskie i wówczas mówi się o androgenezie, przeciwstawiając ją gynogenezie. Gynogeneza to forma rozwoju jednopłciowego, w której plemnik aktywuje komórkę jajową, powodując jej rozwój, ale jej jądro (przedjądro męskie) nie łączy się z jądrem żeńskim i nie uczestniczy w piciu. U jednego gatunku karasia znana jest naturalna gynogeneza, której jaja inseminowane są nasieniem innego gatunku, co aktywuje jaja, ale jądro plemnika nie uczestniczy w tworzeniu zygoty. Androgeneza jest zjawiskiem znacznie rzadszym, a gdy do niej dochodzi (naturalnie lub sztucznie), rozwój następuje bez przedjądrza żeńskiego na bazie jądra męskiego i przedjądra męskiego.
Męskie komórki rozrodcze - plemniki w przeciwieństwie do oocytów są małe, liczne i ruchliwe. Każda grupa plemników jest pochodną jednej komórki początkowej i rozwija się jako klon syncytialnie połączone komórki, a pod względem liczby i niektórych cech strukturalnych daje grupę pojedynczych ruchliwych komórek. Sam rozwój plemników jest podobny u różnych zwierząt. Spermatogeneza jest zawsze ściśle powiązana z pomocniczymi komórkami usługowymi pochodzenia somatycznego. Względne położenie komórek rozrodczych i somatycznych obsługujących dość specyficznie charakteryzuje spermatogenezę i jest przedmiotem największego zainteresowania. Bardziej słuszne jest traktowanie rozwoju nasienia nie jako „biografii” pojedynczej męskiej komórki rozrodczej, ale jako historii życia klona.
Męskie komórki rozrodcze nigdy nie rozwijają się samodzielnie, ale rosną jako klony komórek połączonych syncytialnie, gdzie wszystkie komórki wpływają na siebie nawzajem.
U większości zwierząt w procesie spermatogenezy biorą udział pomocnicze komórki somatyczne nabłonka pęcherzykowego („podtrzymujące”, „karmiące”).
Komórki rozrodcze i związane z nimi komórki pomocnicze na wczesnym etapie rozwoju są oddzielone od komórek somy warstwą komórek granicznych, które pełnią funkcję barierową. Wewnątrz samej gonady następuje dalsza separacja strukturalna w postaci cyst lub kanalików, gdzie pomocnicze komórki pęcherzykowe tworzą specyficzne środowisko dla spermatogenezy.
Pierwotne komórki rozrodcze, w tym męskie, u wielu zwierząt można zidentyfikować na długo przed powstaniem gonad, a często nawet na bardzo wczesnych etapach rozwoju. Komórki rozrodcze pojawiają się na wczesnym etapie rozwoju embrionalnego w fałdach narządów płciowych rozciągających się wzdłuż jamy ciała. U młodych łososi (łosoś różowy, łosoś kumpel, łosoś sockeye, łosoś masu, łosoś coho i łosoś atlantycki) pierwotne komórki rozrodcze znajdują się na etapie tworzenia pierwotnych przewodów nerkowych. W zarodku łososia atlantyckiego pierwotne komórki rozrodcze zidentyfikowano w wieku 26 dni. W narybku rybnym gonady występują już w postaci włosowatych sznurków.
Osobliwość Proces rozwoju plemników – spermatogeneza – polega na wielokrotnej redukcji komórek. Każda pierwotna spermatogonia dzieli się kilka razy, w wyniku czego dochodzi do gromadzenia się spermatogonii pod jedną błoną, zwanej cystą (etap reprodukcji). Ilość spermatogonii powstałej podczas ostatniego podziału nieznacznie wzrasta, w jej jądrze zachodzą przemiany mejotyczne, a spermatogonia przekształca się w spermatocyt pierwszego rzędu (stadium wzrostu). Następują wtedy dwa kolejne podziały (etap dojrzewania): spermatocyt pierwszego rzędu dzieli się na dwa spermatocyty drugiego rzędu, w wyniku podziału, z którego powstają dwa plemniki. W kolejnej – końcowej – fazie powstawania plemniki przekształcają się w plemniki. W ten sposób z każdego spermatocytu powstają cztery plemniki z połową (haploidalnym) zestawem chromosomów. Otoczka cysty pęka, a plemniki wypełniają kanaliki nasienne. Dojrzałe plemniki opuszczają jądro przez nasieniowody, a następnie przez przewód.
Plemnik wprowadza do komórki jajowej materiał jądrowy, który odgrywa ważną rolę w dziedziczeniu i przemianach w późniejszych stadiach rozwoju, ale nie ma znaczącego wpływu na początkowe stadia. Jajko zawiera wszystko, co niezbędne do pełnego rozwoju dorosły. Dojrzałe jajo jest gotowe do rozwoju; czeka jedynie na odpowiedni bodziec, aby rozpocząć rozkład na jednostki komórkowe, co stanowi pierwszy krok niezbędny do rozwoju tkanek i narządów złożonego dorosłego organizmu. W wielu przypadkach proces ten może zostać wywołany bodźcami fizycznymi lub chemicznymi. Jednak w normalnych warunkach początek procesu rozwoju jest stymulowany przez penetrację plemnika do komórki jajowej.
Pytania do samokontroli
1. Jakie znasz rodzaje komórek płciowych ryb? Opisz ich. W jakim procesie powstają komórki płciowe?
2. Jakie rodzaje odżywiania są dostępne dla komórek jajowych?
3. Jakie rodzaje jaj mają ryby? Klasyfikacja według rozmiaru, kształtu, rozmiaru.
4. Opisz budowę jaja rybiego. Struktura muszli. Co to jest mikropyl?
5. Czym jest partenogeneza?
6. Jak nazywają się męskie komórki rozrodcze? W jakich formach i rodzajach występują?
BIBLIOGRAFIA
Główny
1.Kalajda, M.L. Histologia ogólna i embriologia ryb / M.L. Kalaida, M.V. Nigmetzyanova, S.D. Borisova // - Perspektywa nauki. Sankt Petersburg. - 2011. - 142 s.
2. Kozlov, N.A. Histologia ogólna / N.A. Kozlov // - Petersburg - Moskwa - Krasnodar. "Łania." - 2004
3. Konstantinow, V.M. Anatomia porównawcza kręgowców / V.M. Konstantinow, S.P. Szatalowa // Wydawca: „Akademia”, Moskwa. 2005. 304 s.
4. Pawłow, DA Zmienność morfologiczna we wczesnej ontogenezie ryb doskonałokostnych / D.A. Pawłow // M.: GEOS, 2007. 262 s.
Dodatkowy
1. Afanasjew, Yu.I. Histologia / Yu.I. Afanasjew [itd.] // - M.. „Medycyna”. 2001
2.Bykow, V.L. Cytologia i histologia ogólna / V.L. Bykow // - Petersburg: „Sotis”. 2000
3.Aleksandrowskaja, O.V. Cytologia, histologia, embriologia / O.V. Aleksandrowska [i inni] // - M. 1987
