Pozyskanie dojrzałych hodowców jesiotrów. Układ rozrodczy ryb Jakie dojrzałe komórki rozrodcze mają ryby?

ROZDZIAŁ I
BUDOWA I NIEKTÓRE CECHY FIZJOLOGICZNE RYB

UKŁAD GENITALNY

Rozwój układ moczowo-płciowy w ewolucji ryb doprowadziło do oddzielenia się przewodów rozrodczych od przewodów wydalniczych.

Cyklostomy nie mają specjalnych przewodów rozrodczych. Z pękającej gonady produkty seksualne dostają się do jamy ciała, z niej - przez pory narządów płciowych - do zatoki moczowo-płciowej, a następnie przez mocz otwarcie narządów płciowych są wyprowadzane.

U ryb chrzęstnych układ rozrodczy jest połączony z układem wydalniczym. U samic większości gatunków jaja są uwalniane z jajników przez kanały Müllera, które działają jak jajowody i otwierają się do kloaki; Kanał Wolffa to moczowód. U samców wilków kanał pełni funkcję nasieniowodu, a także otwiera się do kloaki poprzez brodawkę moczowo-płciową.

U ryb kostnych kanały Wolffa służą jako moczowody, kanały Müllera są u większości gatunków zredukowane, a produkty rozrodcze są wydalane przez niezależne przewody płciowe, które otwierają się do otworu moczowo-płciowego lub narządów płciowych.

U samic (większość gatunków) dojrzałe jaja są uwalniane z jajnika przez krótki przewód utworzony przez błonę jajnika. U mężczyzn kanaliki jąder łączą się z nasieniowodem (niepołączonym z nerką), który otwiera się na zewnątrz przez otwór moczowo-płciowy lub narządy płciowe.

Gruczoły płciowe, gonady - jądra u mężczyzn i jajniki lub jajniki u kobiet - formacje przypominające wstążki lub worki wiszące na fałdach otrzewnej - krezki - w jamie ciała, nad jelitami, pod pęcherzem pławnym. Struktura gonad, które są podobne w rdzeniu, ma pewne cechy szczególne u różnych grup ryb. U cyklostomów gonada jest niesparowana; u prawdziwych ryb gonady są przeważnie sparowane. Różnice w kształcie gonad u różnych gatunków wyrażają się głównie w częściowym lub całkowitym połączeniu par gruczołów w jeden niesparowany (samica dorsza, okonia, węgorza, samca myszoskoczka) lub w wyraźnie wyrażonej asymetrii rozwoju: często gonady są różne pod względem objętości i wagi (gromadnik, karaś srebrny itp.), aż do całkowitego zniknięcia jednego z nich. Od wewnętrznej strony ścian jajnika poprzeczne płytki zawierające jaja wystają do jego szczelinowej jamy, na której rozwijają się komórki rozrodcze. Podstawą płytek są sznury tkanki łącznej z licznymi rozgałęzieniami. Wzdłuż pasm biegną silnie rozgałęzione naczynia krwionośne. Dojrzałe komórki rozrodcze spadają z płytek składających jaja do jamy jajnika, która może znajdować się pośrodku (na przykład okoń) lub z boku (na przykład karpiowate).

Jajnik łączy się bezpośrednio z jajowodem, który wyprowadza jaja. W niektórych postaciach (łosoś, stynka, węgorz) jajniki nie są zamknięte, a dojrzałe jaja wpadają do jamy ciała, a stamtąd specjalnymi kanałami są usuwane z organizmu. Jądra większości ryb to sparowane struktury przypominające worki. Dojrzałe komórki rozrodcze są uwalniane do środowiska zewnętrznego przez przewody wydalnicze – nasieniowody – przez specjalny otwór narządowy (u samców łososia, śledzia, szczupaka i niektórych innych) lub przez otwór moczowo-płciowy zlokalizowany za odbytem (u samców większości ryb kostnoszkieletowych). .

Rekiny, płaszczki i chimery mają dodatkowe gruczoły płciowe (przednią część nerki, która staje się narządem Leydiga); wydzielina gruczołów miesza się z plemnikami.

U niektórych ryb koniec nasieniowodu jest rozszerzony i tworzy pęcherzyk nasienny (niehomologiczny z narządami o tej samej nazwie u wyższych kręgowców).

Wiadomo o funkcji gruczołowej pęcherzyka nasiennego u niektórych przedstawicieli ryb kostnych. Z wewnętrznych ścian jądra odchodzą do wewnątrz kanaliki nasienne, zbiegając się do przewodu wydalniczego. W zależności od umiejscowienia kanalików jądra ryb kostnych dzielą się na dwie grupy: karpiowate lub zjadliwe, - u karpia, śledzia, łososia, suma, szczupaka, jesiotra, dorsza itp.; perkoid lub promieniowy - w perciformach, ciernikach itp. (ryc. 24).

Ryż. 24. Rodzaje budowy jąder ryb kostnych
A – nadkoid; B – cyprynoid

W jądrach typu karpiowatego kanaliki nasienne skręcają się w różnych płaszczyznach i bez określonego układu. Dzięki temu na poprzecznych przekrojach histologicznych widoczne są ich poszczególne odcinki o nieregularnym kształcie (tzw. ampułki). Przewód wydalniczy znajduje się w górnej części jądra. Krawędzie jądra są zaokrąglone.

W jądrach typu perkoidalnego kanaliki nasienne rozciągają się promieniowo od ścian jądra. Są proste, przewód wydalniczy znajduje się pośrodku jądra. Jądro w przekroju ma kształt trójkątny.

Wzdłuż ścian kanalików (ampułek) znajdują się duże komórki - pierwotne komórki nasienne, pierwotne spermatogonie i przyszłe plemniki.

Komórki rozrodcze pojawiają się na wczesnym etapie rozwoju embrionalnego w fałdach narządów płciowych rozciągających się wzdłuż jamy ciała. U młodych łososi (łosoś różowy, łosoś kumpel, łosoś sockeye, łosoś masu, łosoś coho i łosoś atlantycki) pierwotne komórki rozrodcze znajdują się na etapie tworzenia pierwotnych przewodów nerkowych. W zarodku łososia atlantyckiego pierwotne komórki rozrodcze zidentyfikowano w wieku 26 dni. W narybku rybnym gonady występują już w postaci włosowatych sznurków.

Oogonia – przyszłe jaja – powstają w wyniku podziału podstawowych komórek nabłonka zarodkowego; są to okrągłe, bardzo małe komórki, niewidoczne gołym okiem. Po podziałach owogonialnych oogonia przekształca się w oocyt. Następnie w trakcie oogenezy – rozwoju komórek jajowych – wyróżnia się trzy okresy: okres szlaku synaptycznego, okres wzrostu (mały – protoplazmatyczny i duży – trofoplazmatyczny) oraz okres dojrzewania.

Każdy z tych okresów dzieli się na kilka faz. Okres szlaku synaptycznego charakteryzuje się głównie transformacją jądra komórkowego (oocytu). Następnie następuje okres małego wzrostu protoplazmy, kiedy następuje wzrost wielkości oocytu w wyniku akumulacji cytoplazmy. Tutaj rozwój oocytów dzieli się na fazę młodzieńczą i fazę pęcherzyka jednowarstwowego.

W fazie młodzieńczej oocyty są jeszcze stosunkowo małe, najczęściej okrągłe, z cienką, bezstrukturalną, tzw. błoną pierwotną (wytwarzaną przez samo jajo), do której przylegają poszczególne komórki pęcherzykowe, a na zewnątrz - komórki tkanka łączna. Jądro oocytu ma wyraźnie widoczną cienką otoczkę; Jest okrągły i duży i prawie zawsze leży pośrodku. Wzdłuż obwodu jądra znajdują się liczne jąderka, większość z nich sąsiaduje z otoczką. W fazie pęcherzyka jednowarstwowego własna błona staje się grubsza, a nad nią tworzy się błona pęcherzykowa z sąsiadującymi pojedynczymi komórkami tkanki łącznej.

W tej samej fazie w oocycie często można wykryć strefę witellogenną. Strefa ta ma strukturę komórkową, piankową i pojawia się w cytoplazmie wokół jądra, w pewnej odległości od niego (strefa okołojądrowa). Pod koniec fazy (i okresu) oocyty powiększyły się tak bardzo, że można je odróżnić za pomocą szkła powiększającego lub nawet gołym okiem.

Podczas powstawania komórki jajowej wraz z przemianami jądra powstają i gromadzą się w niej składniki odżywcze skoncentrowane w żółtku (białka i lipidy) oraz wtrącenia czysto lipidowe, które następnie w trakcie rozwoju zarodka wykorzystywane są do jego potrzeb plastycznych i energetycznych. Proces ten rozpoczyna się w okresie dużego wzrostu oocytu, kiedy na jego obwodzie pojawiają się wakuole zawierające węglowodany. Zatem okres dużego (trofoplazmatycznego) wzrostu oocytu charakteryzuje się wzrostem nie tylko ilości protoplazmy, ale także akumulacji składników odżywczych i substancji troficznych - białka i tłuszczu.

W okresie dużego wzrostu następuje wakuolizacja cytoplazmy, pojawienie się żółtka i wypełnienie nim oocytu. Okres wielkiego wzrostu również składa się z kilku faz. W fazie wakuolizacji cytoplazmy oocyty, powiększone w porównaniu z fazą poprzednią, mają nieco kanciasty kształt na skutek nacisku sąsiadujących komórek. Błony oocytu – jego własna, pęcherzykowa tkanka łączna – stały się wyraźniejsze. Na obwodzie oocytu tworzą się pojedyncze małe wakuole, które w miarę zwiększania się liczby tworzą mniej lub bardziej gęstą warstwę. Są to przyszłe pęcherzyki korowe lub granulki. Zawartość wakuoli składa się z węglowodanów (polisacharydów), które po zapłodnieniu jaja przyczyniają się do wchłaniania wody pod skorupą i tworzenia przestrzeni periwitelinowej. U niektórych gatunków (łosoś, karp) w cytoplazmie przed wakuolami pojawiają się wtręty tłuszczowe. W jądrze jąderka oddalają się głębiej od otoczki. W kolejnej fazie – początkowej akumulacji żółtka – na obrzeżu oocytu pomiędzy wakuolami pojawiają się oddzielne, drobne kuleczki żółtka, których liczba gwałtownie wzrasta, tak że pod koniec fazy zajmują prawie całe osocze oocytu .

W osłonce właściwej pojawiają się cienkie kanaliki, nadając jej promieniste prążki (Zona radiata); Składniki odżywcze przedostają się przez nie do oocytu. Powyżej własną skorupę u niektórych ryb tworzy się kolejna błona wtórna - błona (pochodna komórek pęcherzykowych otaczających oocyt). Skorupa ta, o zróżnicowanej budowie (galaretowata, plastra miodu lub kosmkowa), po opuszczeniu pęcherzyka jajowego przez oocyt, służy do mocowania jaja do podłoża. Błona pęcherzykowa staje się dwuwarstwowa. Granice rdzenia są wyraźne, ale stały się kręte, „palczaste”.

Kolejna faza – wypełnienie oocytu żółtkiem – charakteryzuje się bardzo silnym wzrostem objętości żółtka, którego cząstki zamiast kulistego uzyskują wielopłaszczyznowy, grudkowaty kształt. Wakuole są dociskane do powierzchni oocytu.

Ze względu na dominację w tym czasie zmian ilościowych (bez znaczących przesunięć morfologicznych) część badaczy uważa za niewłaściwe wyodrębnianie tej fazy jako niezależnej. Pod koniec tej fazy oocyt osiąga swój ostateczny rozmiar. Widoczne są zmiany w żółtku i jądrze: jądro zaczyna się przesuwać (w kierunku bieguna zwierzęcego), jego kontury stają się mniej wyraźne; Cząsteczki żółtka zaczynają się łączyć. Tworzenie powłoki wtórnej zostało zakończone.

Ostatnią fazą rozwoju jest faza dojrzałego oocytu. Cząsteczki żółtka u większości ryb (z wyjątkiem bocji, makropodów i niektórych karpiowatych) łączą się w jednorodną masę, oocyt staje się przezroczysty, cytoplazma koncentruje się na obrzeżach oocytu, a jądro traci swoje kontury.

Przemiany jądra wkraczają w końcową fazę.

Jeden po drugim następują dwa etapy dojrzewania. W rezultacie powstaje jądro dojrzałego oocytu z haploidalną liczbą chromosomów i trzema ciałami redukcyjnymi, które nie uczestniczą w dalszym rozwoju, oddzielają się od komórki jajowej i ulegają degeneracji. Po drugim podziale dojrzewania rozwój mitotyczny jądra osiąga metafazę i pozostaje w tym stanie aż do zapłodnienia.

Dalszy rozwój (tworzenie przedjądra żeńskiego i oddzielenie ciała kierunkowego) następuje po zapłodnieniu.

Przez swoją własną (Z. radiata) przechodzi kanał (mikropyl), galaretowatą błonę, przez którą plemnik przedostaje się do komórki jajowej podczas zapłodnienia. Teleosts mają jeden mikropyl, jesiotry mają kilka: jesiotr gwiaździsty - do 13, bieługa - do 33, jesiotr czarnomorsko-azowski - do 52. Dlatego polispermia jest możliwa tylko u jesiotrów, ale nie u teleostów.

Podczas owulacji błony pęcherzykowe i tkanki łącznej pękają i pozostają na płytkach zawierających jaja, a uwolniony z nich oocyt, otoczony własnymi i galaretowatymi błonami, wpada do jamy jajnika lub jamy ciała. Tutaj owulowane jaja znajdują się w płynie jamy (jajnika), zachowując zdolność do zapłodnienia przez stosunkowo długi czas (tab. 3). W wodzie lub poza płynem jamy ustnej szybko tracą tę zdolność.

U rekinów i płaszczek, które charakteryzują się zapłodnieniem wewnętrznym, zapłodnione jajo poruszające się wzdłuż dróg rodnych jest otoczone inną - trzeciorzędową - błoną. Substancja przypominająca róg tej skorupy tworzy twardą kapsułkę, która niezawodnie chroni zarodek w środowisku zewnętrznym (patrz ryc. 34).

Podczas rozwoju oocytów, wraz z innymi zmianami, następuje kolosalny wzrost ich wielkości: zatem w porównaniu z oogonią powstałą podczas ostatniego podziału oogonii, objętość dojrzałego oocytu zwiększa się u okonia 1 049 440 razy, u płoci - o 1 271 400 razy.

U jednej samicy oocyty (a po owulacji jaja) nie są tej samej wielkości: największe mogą być 1,5–2 razy większe niż najmniejsze. Zależy to od ich umiejscowienia na blaszce jajorodnej: oocyty leżące w pobliżu naczyń krwionośnych są lepiej zaopatrzone w składniki odżywcze i osiągają większe rozmiary.

Charakterystyczną cechą procesu rozwoju plemników - spermatogenezy - jest wielokrotna redukcja komórek. Każda pierwotna spermatogonia dzieli się kilka razy, w wyniku czego dochodzi do gromadzenia się spermatogonii pod jedną błoną, zwanej cystą (etap reprodukcji). Ilość spermatogonii powstałej podczas ostatniego podziału nieznacznie wzrasta, w jej jądrze zachodzą przemiany mejotyczne, a spermatogonia przekształca się w spermatocyt pierwszego rzędu (stadium wzrostu). Następują wtedy dwa kolejne podziały (etap dojrzewania): spermatocyt pierwszego rzędu dzieli się na dwa spermatocyty drugiego rzędu, w wyniku podziału, z którego powstają dwa plemniki. W kolejnej – końcowej – fazie powstawania plemniki przekształcają się w plemniki. W ten sposób z każdego spermatocytu powstają cztery plemniki z połową (haploidalnym) zestawem chromosomów. Otoczka cysty pęka, a plemniki wypełniają kanaliki nasienne. Dojrzałe plemniki opuszczają jądro przez nasieniowody, a następnie przez przewód.

Charakterystyczną cechą rozwoju jąder jest silna nierówność (asynchronia) rozwoju narządu jako całości. Ta nierówność jest szczególnie wyraźna u ryb dojrzewających po raz pierwszy, ale dość wyraźnie wyraża się także u osobników w okresie tarła, które ponownie dojrzeją. W rezultacie prawie wszystkie samce składają tarło porcjami i można od nich uzyskać plemniki przez długi czas.

Proces dojrzewania komórek rozrodczych różne ryby ogólnie według tego samego schematu. W miarę rozwoju komórek płciowych w jajnikach i jądrach zmienia się zarówno wygląd, jak i wielkość gonad. Stało się to przyczyną stworzenia tzw. skali dojrzałości gonad, za pomocą której możliwe byłoby określenie stopnia dojrzałości produktów rozrodczych na podstawie zewnętrznych cech gonad, co jest bardzo istotne w badaniach naukowych i komercyjnych. Częściej niż inni posługują się uniwersalną 6-punktową skalą, która opiera się na wspólnych cechach różne rodzaje ryby (tab. 4, 5; ryc. 25, 26).

Zaproponowano także inne skale, które uwzględniają cechy dojrzewania niektórych grup ryb. Zatem dla jajników karpia i okonia V. M. Meyen zaproponował skalę 6-punktową, a dla jąder S. I. Kulaeva - skalę 8-punktową.

Ryż. 25. Etapy (I – VI) dojrzałości gonad u samic ryb kostnych


Ryż. 26. Etapy dojrzałości gonad samców ryb kostnych (wg Sakuna, Butskaya, 1968):
A – etap I (1 – spermatogonia, 2 – dzieląca się spermatogonia, 3 – naczynie krwionośne z czerwonymi krwinkami, 4 – błona jądra); B – stopień II (1 – spermatogonia, 2 – dzieląca się spermatogonia, 3 – naczynie krwionośne, 4 – błona jądra, 5 – cysta z małą spermatogonią); B – stopień III (1 – spermatogonia, 2 – cysta ze spermatocytami pierwszego rzędu, 3 – cysta z dzielącymi się spermatocytami pierwszego rzędu, 4 – cysta z dzielącymi się spermatocytami drugiego rzędu, 5 – cysta ze spermatocytami, 6 – cysta z dojrzałymi plemnikami, 7 – błona jądra, 8 – nabłonek pęcherzykowy); D – etap IV (1 – spermatogonia, 2 – plemniki, 3 – błona jądra, 4 – nabłonek pęcherzykowy); D – etap VI (1 – spermatogonia, 2 naczynia krwionośne, 3 – błona jądra, 4 – pozostałości plemników, 5 – nabłonek pęcherzyków)

U zdecydowanej większości ryb inseminacja ma charakter zewnętrzny. Ryby chrzęstne, które charakteryzują się wewnętrzną inseminacją i żyworodnością, mają odpowiednie zmiany w strukturze aparatu rozrodczego. Rozwój ich zarodków następuje w tylnej części jajowodów, zwanej macicą. Wśród ryb kostnych żywotność jest typowa dla gambusii, labraksa i wielu innych ryby akwariowe. Ich młode rozwijają się w jajniku.

Do pomyślnej realizacji działań związanych z hodowlą ryb i rekultywacją wymagana jest dogłębna wiedza na temat cyklu życiowego cennych gatunków ryb i najważniejszego ogniwa - reprodukcja.

Pojęcie hodowla ryb obejmuje: rozwój gonad, tarło, zapłodnienie, rozwój embrionalny i postembrionalny. Rozmnażanie możliwe jest dopiero po osiągnięciu przez ryby dojrzałości płciowej, tj. dojrzewanie ich produktów rozrodczych (u samic, jaj, u samców, plemników).

Dojrzałość płciowa u niektórych gatunków ryb występuje w godz w różnym wieku. Większość karpi, okoni łosoś osiągają dojrzałość płciową w wieku 6-12 lat. U niektórych gatunków ryb okres rozwoju komórek rozrodczych jest opóźniony na dłuższy czas. W ten sposób jesiotr osiąga dojrzałość płciową w wieku 6-12 lat (bieługa - 10-16 lat). Dojrzałość płciowa u samców następuje 1-2 lata wcześniej niż u samic.

Czynnikami mającymi ogromny wpływ na proces dojrzewania produktów rozrodu ryb są: otoczenie zewnętrzne(przede wszystkim temperatura i warunki żywieniowe). Niskie temperatury, a także niewystarczające odżywianie mogą zatrzymać dojrzewanie gonad. Prawidłowe dojrzewanie komórek rozrodczych – oogeneza u kobiet i spermatogeneza u mężczyzn – zachodzi tylko w sprzyjających warunkach środowiskowych. Każda komórka rozrodcza, zanim w końcu dojrzeje, musi przejść przez szereg etapów swojego rozwoju. W tym przypadku wyróżnia się dwa procesy: 1 – okres osiągania dojrzałości płciowej, rozpoczynający się od pojawienia się pierwotnych komórek rozrodczych, a kończący na powstaniu dojrzałych produktów rozrodczych; 2 – okresowe dojrzewanie określonej części produktu rozrodczego w okresie międzytarłowym (po osiągnięciu dojrzałości płciowej). Pierwszy okres jest dłuższy, drugi trwa różnie dla różnych gatunków ryb. W ten sposób karp i leszcz rozmnażają się co roku, ale jesiotry umierają po 3-5 latach, a łosoś pacyficzny umiera po tarle.

Stopień dojrzałości gonad można określić za pomocą skali dojrzałości. W przypadku karpi i okoni istnieją skale SI. Kulaev i V.A. Meyen, dla jesiotra - A.Ya. Nedoshivina, A.V. Lukin i I.N. Molchanova. Z. Sakun i N.A. Butskaya opracowała dwie uniwersalne skale dla wszystkich handlowych grup ryb. Na podstawie tych dwóch skal opracowano jedną uniwersalną skalę dojrzałości gonad kobiet i mężczyzn.

Rozwój żeńskich komórek rozrodczych (oogeneza) składa się z następujących etapów:

Etap I – niedojrzałe młode osobniki. Gonady wyglądają jak grube przezroczyste sznury przylegające do ścian jamy ciała. Reprezentowane są komórki rozrodcze u kobiet oogonia, lub młode oocyty w okresie wzrostu protoplazmatycznego.

Etap II – osobniki dojrzewające lub osobniki z wytworzeniem produktów rozrodczych po tarle. Jajniki są przezroczyste. Biegnie wzdłuż nich duże naczynie krwionośne. Oglądane przez szkło powiększające jajniki są wyraźnie widoczne oocyty okres wzrostu protoplazmy. Poszczególne oocyty zakończyły już wzrost i można je rozróżnić gołym okiem. Wokół oocytów tworzy się warstwa komórek pęcherzykowych wytworzona z nabłonka zarodkowego jajników.

Etap III - gonady są dalekie od dojrzałości, ale są już stosunkowo dobrze rozwinięte. Jajniki zajmują od jednej trzeciej do połowy objętości jamy brzusznej i zawierają małe, nieprzezroczyste oocyty, widoczne gołym okiem, zwykle o różnych odcieniach żółty kolor. Kiedy jajnik pęka, tworzy się kilka grudek. Na tym etapie wzrost oocytów następuje nie tylko z powodu protoplazmy, ale także w wyniku gromadzenia się składników odżywczych w osoczu, reprezentowanych przez granulki żółtka i kropelki tłuszczu. Okres ten nazywa się okres wzrostu troficznego(duży) .

W zależności od pigmentu charakterystycznego dla różnych gatunków ryb, jajniki uzyskują inny odcień. W cytoplazmie oocytów pojawiają się wakuole zawierające substancje o charakterze węglowodanowym. Tworzy się błona oocytu. Najpierw na powierzchni oocytu tworzą się mikrokosmki. U podstawy mikrokosmków tworzy się cienka warstwa jednorodnego, pozbawionego struktury materiału. Wraz z gromadzeniem się wtrąceń żółtka w oocycie powstaje kolejna warstwa, składająca się z wiązek rurkowych elementów strukturalnych. Następnie warstwa wewnętrzna przekształca się w jednorodną warstwę zewnętrzną, a obie warstwy tworzą jedną powłokę. W zależności od biologii gatunku i ekologii tarła, zdolności adaptacyjnych w procesie filogenezy i innych warunków, skorupa różnych gatunków ryb ma różną budowę. Zatem u jesiotrów składa się z kilku warstw (złożonej muszli), u niektórych gatunków jest to jedna warstwa.

Podczas badania błony oocytowej pod mikroskopem widoczne są promieniste prążki, stąd nazwa strefa radiata.

Oocyt z uformowaną strefą promienistą jest otoczony przez komórki pęcherzykowe, które tworzą błonę pęcherzykową, czyli pęcherzyk. U niektórych gatunków ryb nad strefą promienistą tworzy się kolejna muszla (galaretowata), na przykład u płoci. Niektóre gatunki ryb mają kosmkową skorupę.

Etap IV - gonady osiągnęły lub prawie osiągnęły pełny rozwój. Oocyty są duże i łatwo je od siebie oddzielić. Kolor jajników jest różny u różnych gatunków ryb. Zwykle jest żółty, pomarańczowy, u jesiotra jest szary lub czarny. Komórki rozrodcze są reprezentowane przez oocyty, które zakończyły wzrost trofoplazmatyczny i utworzyły błony i mikropyle. Na etapie 4, a także na etapach 2 i 3 dojrzałości u ryb wielopierścieniowych, jajniki zawierają oogonia i oocyty z okresu wzrostu protoplazmatycznego, które stanowią rezerwę na przyszłe tarło.

Skorupa jaja zawiera mikropyl, dzięki któremu plemniki mogą przedostać się do wnętrza komórki jajowej. Jesiotry mają ich kilka (jest to adaptacja gatunkowa). Jądro oocytu przesuwa się w stronę mikropylu. Jądro i żółtko są polarne. Jądro znajduje się na biegunie zwierzęcym, żółtko na biegunie wegetatywnym. Żółtko łączy się z tłuszczem.

Etap V – osobniki płynne. Jaja swobodnie wypływają z otworu płciowego. Po przejściu do etapu V jaja stają się przezroczyste. Kiedy pęcherzyk pęka, komórka jajowa następnie przedostaje się do jajowodu lub jamy brzusznej, w zależności od budowy jajnika. Po owulacji następuje szybki proces dojrzewania – mejoza.

U jesiotrów jądra jądra rozpuszczają się, a jądro zmniejsza się. Powłoka jądra rozpuszcza się i rozpoczynają się podziały. Następnie oocyty ryb są uwalniane z błony pęcherzykowej.

Etap VI – osobniki rozmnażane. Produkty rozrodcze zostały zmiecione. Jajniki są małe, zwiotczałe. Pozostałe pęcherzyki, a także niezłożone jaja ulegają resorpcji. Po ponownym wchłonięciu pustych pęcherzyków jajniki wchodzą w II, a w niektórych przypadkach III etap dojrzałości.

Rozważana skala etapów dojrzałości gonad może być wykorzystana do analizy ryb z tarłem jednorazowym, u których samice składają tarło tylko raz w roku. Jednakże niektóre gatunki ryb składają tarło w porcjach (wiele karpi, śledzi i okoni). Samice takich ryb składają tarło kilka razy w ciągu roku, a ich oocyty dojrzewają w różnym czasie.

Proces rozwój męskich komórek rozrodczych (spermatogeneza) obejmuje kilka etapów:

Etap I. Przedstawiono męskie komórki rozrodcze spermatogonia. Spermatogonia to pierwotne komórki rozrodcze, które powstają u samców ryb z nabłonka otrzewnej.

Etap II. Jądra wyglądają jak płaskie sznury o szarawym lub biało-różowym kolorze. Komórki płciowe są reprezentowane przez spermatogonie w stanie reprodukcji. Dzielą się kilkakrotnie, zwiększając ich liczbę, z każdej początkowej grupy powstaje pięć (takie grupy nazywane są cystami).

Etap III. Jądra na tym etapie znacznie zwiększają swoją objętość, są gęste i elastyczne. Spermatogonia wchodzi w okres wzrostu i zamienia się w spermatocyty Zamawiam. Następnie zaczynają się dzielić i z każdego spermatocytu pierwszego rzędu powstają dwa spermatocyty drugiego rzędu, a następnie 4 spermatydy mniejszy rozmiar. Powstałe plemniki wchodzą w okres formowania i stopniowo przekształcają się w dojrzałe plemniki.

Etap IV. Jądra na tym etapie są największe i mają mlecznobiały kolor. Na tym etapie spermatogeneza jest zakończona, a kanaliki nasienne zawierają plemniki.

Etap V. Tworzy się płyn nasienny, co prowadzi do upłynnienia masy plemników, powodując ich wyciek.

Etap VI. Rozrodzone osobniki. Jądra są małe i zwiotczałe. Pozostałe plemniki są odsłonięte fagocytoza.

Pozyskanie dojrzałych reproduktorów, których komórki jajowe i nasienie nadają się do zapłodnienia - istotny element prace nad sztuczną hodowlą jesiotra.

Wcześniej pozyskiwanie takich ryb było możliwe jedynie w pobliżu naturalnych tarlisk lub bezpośrednio na tarliskach, gdzie trzeba było organizować specjalne połowy. Spośród złowionych ryb tylko niewielka część (nie więcej niż 1-4%) miała dojrzałe jaja i plemniki.

Przy tak zawodnym sposobie pozyskiwania dojrzałych produktów organizowanie sztucznej hodowli na dużą skalę stało się niezwykle trudne.

Ekologiczne i fizjologiczne metody stymulacji dojrzewania produktów rozrodczych

Aby przenieść hodowlę jesiotrów na planowe podstawy, konieczne było opanowanie procesu przenoszenia producentów do stanu tarłowego w celu uzyskania dojrzałych jaj i samego plemnika.

Istnieją dwa sposoby rozwiązania tego problemu. Jeden z nich - środowiskowy - został opracowany przez akademika Akademii Nauk AzSSR A. N. Derzhavina. Uważał, że przy hodowli buhajów należy stworzyć warunki środowiskowe odpowiadające naturalnym, w których następuje rozwój potomstwa. Ponieważ w naturze jaja i plemniki dojrzewają podczas tarła ryb pod prąd, A. N. Derzhavin uznał ten czynnik za główny czynnik wpływający na przyspieszenie dojrzewania produktów rozrodczych. Do przetrzymywania i pozyskiwania dojrzałych tarli zalecił stosowanie owalnych klatek o długości 25 m, szerokości 6 m i głębokości do 1,2 m, w których tworzono prąd i symulowano warunki rzeczne (szybkie prądy itp.). Na dnie takich klatek umieszcza się kamyki. Doprowadzenie wody do klatki jest mechaniczne, przepływ wody wynosi 20 l/s. Poprawę cyrkulacji wody osiąga się poprzez zainstalowanie betonowej ściany o długości 19 m w środkowej części klatki, na całej jej długości, w każdej klatce umieszcza się 50 ryb; osobno kobiety i mężczyźni. Wraz z panującą w klatkach tworzą się sprzyjające warunki temperaturowe i tlenowe. Jednak doświadczenie z takimi klatkami pokazało, że dojrzewa w nich tylko jedna trzecia tarlików, trudno też określić moment, w którym należy sięgnąć po kawior.

Fizjologiczna metoda stymulacji dojrzewania produktów rozrodczych, opracowana przez profesora N.L. Gerbilsky'ego, nie ma tych wad. Polega na wprowadzeniu do mięśni ciała kobiety i mężczyzny acetonowanego preparatu przysadki mózgowej, od których chcą uzyskać dojrzałe komórki jajowe lub plemniki.

Badania wykazały, że w organizmie ryby ważnym regulatorem dojrzewania komórek rozrodczych jest wyrostek mózgowy – przysadka mózgowa, która łączy system nerwowy ciało z gonadami. Przysadka mózgowa, gruczoł dokrewny, wytwarza specjalne substancje - hormony, pod wpływem których producenci przechodzą w stan tarła.

Przysadka mózgowa składa się z dwóch części: mózgowej - neurohypofizy i gruczołowej - adenohypofizy. Hormony gonadotropowe produkowane są przez komórki gruczołowe gruczolaka przysadkowego.

Najlepsze rezultaty uzyskuje się łącząc ekologiczne i fizjologiczne metody stymulacji funkcji płciowych hodowców jesiotrów. Kombinację przeprowadza się w następującej kolejności: najpierw hodowcy trzymani są w specjalnych zbiornikach, a następnie wykonuje się zastrzyk przysadki mózgowej.

Urządzenia do osadzania dla producentów

Hodowcy trzymani są w specjalnych zbiornikach przeznaczonych do łowienia ryb na jigach. Istnieją dwa główne typy gospodarstw jigowych. Jeden z nich został zaprojektowany przez prof. B.N. Kazansky, drugi - przez hodowców ryb Kura (hodowla klatkowa typu Kurinsky).

Przybrzeżny obiekt do jigowania zaprojektowany przez B. N. Kazansky'ego. Farma klatkowa zaprojektowana przez B. N. Kazansky'ego ma ziemne stawy do długoterminowej rezerwy i znajdujące się w ich pobliżu betonowe baseny klatkowe, przeznaczone do krótkotrwałego utrzymania hodowców.

Samice i samce trzymane są oddzielnie.

Staw ziemny składa się z dwóch części: głównej, rozbudowanej, o głębokości do 2,5 m oraz zwężonej, płytszej, o głębokości 0,5-1 m. W tej części stawu powstają warunki symulujące podejście do zasięgu tarła. W części rozszerzonej o większej głębokości warunki zbliżone są do warunków zimowisk.

Staw dla samic ma następujące wymiary: długość 130 m (część poszerzona 100 m i zwężona 30 m), szerokość 20-25 m w części poszerzonej i 4-6 m w części zwężonej. Dno rozszerzonej części jest ziemne, a na zwężonym odcinku wyłożone jest drobnymi gładkimi kostkami brukowymi na zubożonym betonie; Kamyczki są rozrzucone na styku poszerzonych i zwężonych części.

Dopływ wody do stawów odbywa się mechanicznie, dopływ wody odbywa się poprzez żelbetową tacę lub rurę. Woda odprowadzana jest poprzez konstrukcję drenażową, która zapewnia zarówno całkowite odwodnienie stawu, jak i możliwość odprowadzania wody o różnym poziomie. Poziom wody regulują piaski. Stały przepływ wody z 30 l/s można zwiększyć do 300 l/s.

Hodowla klatkowa typu Kura. Jest to staw ziemny o wymiarach 75x12 m, podzielony na trzy części za pomocą betonowej konstrukcji przegrodowej, pośrodku której znajduje się otwór do montażu żaluzji.

W pierwszym odcinku o długości 105 m i głębokości 3 m, producenci przetrzymywani są przez długi czas – od 1 do 1,5 miesiąca. Napełnianie wodą trwa 10-12 godzin, a zrzucanie trwa 5-6 godzin.

Kiedy zbliża się temperatura tarła, tarlaki są przenoszone do drugiego obszaru, którym jest owalny betonowy basen z pionowymi ścianami. W basenie o długości 7 m, szerokości 5 m i głębokości 1 m przeprowadza się wstępne krótkotrwałe przetrzymywanie samic i samców przed wstrzyknięciem (1-3 dni). Przejście z pierwszego do drugiego odcinka odbywa się w formie płynnego wynurzania: sprzęt wędkarski – hamulce służące do odłowu tarlaków, ciągnięte są po specjalnych prowadnicach za pomocą wciągarek elektrycznych sterowanych zdalnie. Druga sekcja jest napełniana wodą w ciągu 30 minut.

W trzecim miejscu producenci są wstrzykiwani i utrzymywani po wstrzyknięciu przysadki mózgowej. Na tym obszarze znajdują się 2 betonowe baseny z pionowymi ścianami. Długość basenu wynosi 5 m, szerokość 3,5, głębokość 1 m. Napełnienie i spuszczenie wody zajmuje 15 minut. Nad basenem znajduje się baldachim. Przenoszenie hodowców z drugiej do trzeciej sekcji, a także ich dostarczanie do działu operacyjnego, w którym pozyskiwany jest kawior, odbywa się za pomocą samobieżnego wciągnika elektrycznego w kołyskach.

Wczesną wiosną z osadnika dopływa cieplejsza woda, co pozwala na wcześniejsze zastrzyki ryb. Producenci przebywają w basenach przez 1-3 dni. Dopływ i odpływ wody z basenów jest niezależny. Woda dostarczana jest za pomocą rury (fletu) umieszczonej po drugiej stronie basenu. Strumienie wody z fletu skierowane są w przeciwnych kierunkach. W wyniku tego zaopatrzenia w wodę poprawia się reżim tlenowy.

W basenie zasadzono 50 hodowców bieługi, 80 jesiotra lub jesiotra i 100 jesiotra gwiaździstego. Zużycie wody w basenach wynosi 30 l/s. Trzecia działka ogrodzona jest płotem, wokół którego posadzono drzewa.

Producenci zbiorów

Dla efektywniejszego wykorzystania producentów w hodowli ryb bardzo ważne ma wiedzę na temat wewnątrzgatunkowych grup biologicznych.

Badanie zasobów poszczególnych gatunków ryb umożliwiło firmie Acad. L. S. Berg stwierdził obecność wewnątrzgatunkowych grup biologicznych w niektórych z nich. Dalsze rozwinięcie tego zagadnienia należy do prof. N. L. Gerbilsky.

Doktryna wewnątrzgatunkowych grup biologicznych opiera się na uznaniu faktu wewnątrzgatunkowej różnorodności biologicznej właściwej dla wszystkich gatunków zwierząt i roślin. U ryb jest to związane przede wszystkim z procesem rozmnażania i można je ustalić, znając czas i miejsce tarła, różnice w cyklu płciowym, temperaturę tarła, kondycję tarlisków w okresie ich wpływania do rzek oraz długość pobytu tarlaków w rzece przed tarłem.

Biologiczna analiza stada jesiotrów pozwala na wybór właściwej lokalizacji wylęgarni ryb, pozwala określić terminy jigowania i przetrzymywania tarli, a także rozwiązać kwestię możliwości uzyskania od nich dojrzałych produktów rozrodczych w dolnym biegu rzeki i podwójne wykorzystanie stawów do odchowu młodych ryb w ciągu jednego sezonu wegetacyjnego. Znając wewnątrzgatunkowe grupy biologiczne, można ustalić harmonogram sezonowy, który pozwala na najbardziej racjonalne wykorzystanie zbiorników i wyposażenia przedsiębiorstw hodowli ryb.

Jako przykład podamy grupy biologiczne jesiotra Kura.

Profesorowie N.L. Gerbilsky i B.N. Kazansky odkryli, że krzyżowanie buhajów jesiotrów z różnych grup biologicznych zwiększa ich żywotność w okresie embrionalnym.

Autor stwierdził, że młode osobniki uzyskane ze skrzyżowania stadnin jesiotrów różnych grup biologicznych przewyższają młode osobniki rodziców należących do tej samej grupy biologicznej pod wieloma ważnymi wskaźnikami hodowli ryb: intensywniej żerują i szybciej rosną, mają wyższy wskaźnik otłuszczenia, wyższą zawartość białka i pierwiastków popiołu.

Pozyskiwanie tarlaków jesiotrów należących do różnych grup biologicznych do celów hodowli ryb odbywa się w różnym czasie.

Tak więc wczesną wiosną jesiotra zbiera się w delcie Wołgi w drugiej połowie kwietnia - na początku maja i wykorzystuje się go do uzyskania dojrzałych produktów płciowych po krótkotrwałej rezerwie w maju. Jesiotra ozimego wybiegu jesiennego zbiera się w październiku, a po długim okresie leżakowania w drugiej połowie kwietnia następnego roku uzyskuje się z niego kawior i nasienie.

• kobiety w pobliżu owulacji mają szczupłe ciało, mniej dojrzała ryba jest bardzo gruba i tłusta;
• u dojrzałych ryb szypułka ogonowa (od tylnego brzegu płetwy grzbietowej do początku łopatki ogonowej) ma przekrój owalny, tj. jego wysokość jest znacznie większa niż szerokość, co świadczy o utracie wagi ryby. U mniej dojrzałych ryb szypułka ogonowa jest grubsza i niższa;
• u osobników dojrzałych pysk jest spiczasty na skutek utraty wagi, u ryb mniej dojrzałych pysk i cała głowa są grubsze;
• Robaki dojrzałych ryb są mniej ostre, skóra jest bardziej pokryta gęstym śluzem.

Aby skupić się na tych znakach, musisz mieć duże doświadczenie w pracy z producentami.

A.E. Andronov (1979) opracował metodę selekcji samic jesiotra na podstawie pomiaru jaj. Wśród samic jesiotra gwiaździstego migrujących do rzeki występuje wiele niedojrzałych ryb, w których gonadach znajduje się dużo niskiej jakości małego kawioru, dlatego konieczne jest wybranie samic z największym kawiorem. Jaja mierzy się za pomocą sondy wyposażonej w skalę o podziałce 2 mm i znaku zerowego w odległości 31 mm od początku szczeliny o średnicy 3 mm. U samic wybranych do hodowli ryb 15 jaj powinno tworzyć rząd kończący się co najmniej na drugiej podziałce skali sondy.

Drugą opcją wyboru samic jesiotra gwiaździstego jest określenie stopnia polaryzacji (skrajnej pozycji) jądra. Wyjęty sondą kawior umieszcza się w płynie Serra (6 części formaldehydu, 3 części alkoholu, 1 część lodu kwas octowy), przemywamy wodą i kroimy maszynką do golenia wzdłuż osi zwierzęco-wegetatywnej.

Położenie jądra w jajach ocenia się pod lupą 7×10 na podstawie odległości jądra od skorupy tyczki zwierzęcej. Samice jesiotra gwiaździstego uważa się za dobre, jeśli ich jądro przesunęło się z pierwotnego położenia na odległość nieprzekraczającą promienia jaja.

Badacz Instytutu Badawczego Rybołówstwa Azov L.V. Badenko opracował metodę selekcji producentów w oparciu o wskaźniki fizjologiczne, która pozwala bardziej obiektywnie ocenić wartość producentów dla celów hodowli ryb. Metoda opiera się na fakcie, że jesiotr podczas migracji tarłowych wpływa do rzek w różny sposób stan fizjologiczny. Wyjaśnia to zarówno nierówna dojrzałość produktów rozrodczych, jak i różny poziom akumulacji substancji rezerwowych w ich ciałach. Tak więc, według L.F. Golovanenko, należy zarezerwować wyczerpanych hodowców, którzy nie nadają się do uzyskania kawioru i nasienia, a także osobniki, które mają produkty płciowe w IV niepełnym stadium dojrzałości, i można wstrzykiwać ryby w IV stadium dojrzałości bezpośrednio po zbiorach w kopalniach.

Oczywiste jest, jak ważna jest ocena stada lęgowego wybranego do hodowli ryb. Najłatwiej to zrobić poprzez badanie krwi. Okazało się, że najbardziej jednoznaczną odpowiedź na pytanie o jakość producentów dają takie wskaźniki, jak zawartość hemoglobiny i skład białek surowicy. Na ich podstawie L.V. Badenko zaleca wybór producentów.

Na początku tarła samice mają znaczny poziom tłuszczu i białka, mają wysokie tempo metabolizmu i oddychania, dlatego takie ryby należy odłowić w pierwszej kolejności. Zwykle mają poziom tłuszczu, białka, metabolizmu i oddychania charakterystyczny dla ryb składających w pełni dojrzałe jaja.

Preparat sporządza się z połowów niewodów, wybierając producentów o optymalnej wadze do pracy (nie więcej niż 15-20 kg dla jesiotra i jesiotra gwiaździstego oraz 100 kg dla bieługi), bez urazów, siniaków itp.

Przy określaniu masy ryb zabrania się ważenia wybranych producentów na skalach dziesiętnych w miejscu odbioru, gdyż ważenie bez wody negatywnie wpływa na stan ryb. Masę ciała należy określić za pomocą specjalnej tabeli, która zawiera dane dotyczące stosunku długości ciała do masy.

Duże znaczenie ma także dobór wieku producentów. Zdaniem A.A. Popowej najlepsze potomstwo rodzą jesiotry przychodzące na tarło po raz drugi i trzeci.

Producenci są przygotowani w taki sposób, aby mieć rezerwę na wypadek odpadów w transporcie i dojrzewaniu: dla bieługi i jesiotra gwiaździstego od 20 do 30%, a dla jesiotra od 10 do 30% masy Łączna przygotowanych producentów.

Producenci wybierani są bezpośrednio z niewodu wyładunkowego. Pojedynczo ostrożnie układa się je na brezentowym noszach i przenosi na mały statek do połowu żywych ryb (mattenka), na który można zebrać nie więcej niż 10 osobników. Matka dostarczana jest do dużego statku z żywymi rybami, którym producenci są transportowani do wylęgarni jesiotrów. W samobieżnym slocie na żywe ryby typu Astrachań sadzi się 5 belug lub 10 jesiotrów, taką samą liczbę cierni lub 16 jesiotrów gwiaździstych. Długość szczeliny typu Astrachań wynosi 13 m, szerokość 5 mi głębokość 0,8 m, szybkość ładowania: jeden jesiotr na 1,5-2 m 3, jeden jesiotr na 1 m 3 i jedna bieługa na 5-7 m 3. Aby zapobiec obrażeniom ryb, ramy szczelin są przykryte struganymi deskami.

Producenci dostarczeni do wylęgarni ryb przenoszeni są na molo za pomocą specjalnego dźwigu o udźwigu 500 kg. Ryby transportowane są w płóciennej kołysce wypełnionej wodą, zawieszonej na metalowej rurowej ramie. Od góry przykryty jest płóciennym fartuchem.

Po podniesieniu na pomost kołyska jest natychmiast instalowana na rurowym stojaku z tyłu samochodu lub podwozia samobieżnego i transportowana do stawu. Kołyskę można także przemieszczać elektryczną kolejką jednoszynową. Następnie kołyskę wraz z rybą opuszcza się po pochyłej płaszczyźnie do zbiornika. Ryby można również transportować i rozładowywać za pomocą kolejki jednoszynowej i podnośnika towarowego. Przy tej metodzie transportu kołyska z producentami jest zdejmowana z podwozia za pomocą podnośnika, przenoszona nad stawem, a następnie opuszczana. Do wewnątrzzakładowego transportu producentów wykorzystywane są także tory jednoszynowe z wciągnikami elektrycznymi.

Ze stawów tarlaków wyłapują je za pomocą włók (wytężających narzędzi połowowych) wyposażonych w pływak i obciążniki. Pływak składa się z piankowych pływaków umieszczonych na górze. Do dolnej ramy przymocowane są obciążniki wykonane z wypalanej gliny. Do końców skrzydeł przywiązane są drewniane klocki zwane nagami. Długość przeciągu jest o 40-50% większa niż szerokość stawu, a wysokość o 30-40% większa niż największa głębokość zbiornika.

Ryby łowi się najczęściej w jednym, podłużnym rzucie. Ciągną niewód za brzegi po obu stronach zbiornika. Zatapianie odbywa się na płytkim obszarze przy przodzie stawu. Miejsce tonięcia wzmocnione jest zasypką skalną i żwirową. Do tej sekcji podłączony jest podwieszony tor podnoszący, który ma na celu zmechanizować podnoszenie producentów.

Złapane tarlaki umieszcza się w kołysce lub na noszach i doprowadza do podnośnika, który dostarcza ryby do klatek, gdzie tarlaki są wstrzykiwane.

Po użyciu dragi wiesza się na wieszakach do wyschnięcia.

Przygotowanie przysadki mózgowej

Przysadkę mózgową najlepiej zbierać wiosną, w okresie lęgowym. W tym czasie produkty rozrodcze ryb znajdują się w fazie IV, a maksymalna ilość hormonów gromadzi się w przysadce mózgowej.

Niemożliwe jest pobranie przysadki mózgowej z tarła ryb, ponieważ zawarte w nich wcześniej hormony są całkowicie zużywane w okresie lęgowym. Do odłowu nie można wykorzystać przysadki mózgowej niedojrzałych ryb. Jednocześnie T.I. Faleeva zauważa, że ​​​​przysadkę mózgową można zbierać jesienią i zimą.

Aby usunąć przysadkę mózgową, otwiera się czaszkę żywej lub świeżej ryby za pomocą stalowej trepany, która jest metalowym prętem wyposażonym w rączkę. Na dolnym końcu pręta zamontowany jest cylinder, który można przesuwać w pionie wzdłuż pręta i zabezpieczać śrubą. U podstawy cylindra znajdują się zaostrzone i rozstawione zęby, które wcinają się w tkankę podczas obrotu trepany. Jego średnica wynosi 30 mm. Aby uzyskać przysadkę mózgową z bieługi, stosuje się duże trefiny o średnicy 35-40 mm.

Trepanę umieszcza się na środku głowy ryby, za oczami. Aby dokładnie zamontować trepanę, cylinder podnosi się do pełnej pojemności, w wyniku czego dolny spiczasty koniec pręta wystaje poza krawędź cylindra. Następnie obróć uchwyt i po wykonaniu kilku obrotów podnieś pręt, aby uniknąć zniszczenia przysadki mózgowej. Następnie trepanę wkręca się całkowicie i usuwa się wycięty czop składający się z kości i chrząstki. W czapce czaszki powstaje dziura, która, kiedy prawidłowa instalacja Trefina znajduje się powyżej dołu przysadki mózgowej. Do uzyskania przysadki mózgowej wykorzystuje się także elektrotrefinę, czyli wiertarkę elektryczną, która znacznie ułatwia i przyspiesza preparację przysadki mózgowej.

Mózg i płyn są usuwane z jamy czaszki. Na tym kończą się operacje przygotowawcze i można przystąpić do usuwania przysadki mózgowej.

Przysadkę mózgową usuwa się za pomocą używanej w chirurgii łyżki Volkmanna, która ma ostre krawędzie i długą rączkę. W żadnym wypadku nie należy pobierać tkanki gruczołu pęsetą, ponieważ może to spowodować uszkodzenie przysadki mózgowej i sprawić, że nie będzie się nadawał do wstrzyknięcia. Za pomocą łyżki Volkmanna można łatwo usunąć przysadkę mózgową i przenieść ją do naczynia. Usuniętą przysadkę mózgową odtłuszcza się i odwadnia, po czym aceton wlewa się do naczynia z dobrze zamykaną pokrywką (dzbanek). Po usunięciu każdego przysadki mózgowej kombajn umieszcza go w acetonie. Po usunięciu wszystkich przysadek mózgowych umieszcza się je w nowej porcji acetonu na 12 godzin, następnie ponownie opróżnia i wlewa nową porcję, w której odtłuszczanie następuje po 6-8 godzinach. Przysadkę mózgową wyjętą z butelki suszy się na bibule filtracyjnej.

Do leczenia przysadki mózgowej można stosować wyłącznie bezwodny, chemicznie czysty aceton. Objętość acetonu powinna być 10-15 razy większa niż masa zawartych w nim przysadek mózgowych. Ponowne użycie acetonu nasyconego wodą jest niedopuszczalne.

W celu długotrwałego przechowywania wysuszone przysadki mózgowe umieszcza się w plastikowych torebkach i etykietuje.

Wskazane jest wybranie przysadki mózgowej o tej samej masie do oddzielnych worków, aby w warunkach polowych w wylęgarni ryb można było dokładnie obliczyć stosowane dawki.

Pobranie przysadki mózgowej należy przeprowadzić centralnie dla kilku roślin jednocześnie z określeniem aktywności gonadotropowej produkowanego leku na obiektach badawczych.

Scentralizowane zaopatrzenie przez doświadczonych specjalistów pozwala nam zapewnić wysoką jakość przysadki mózgowej i możliwość stosowania optymalnych dawek.

Określanie jakości przysadki mózgowej

Aby określić ilość hormonów znajdujących się w przysadce mózgowej i jakość powstałych leków, przeprowadza się badania biologiczne, które sprowadzają się do wyjaśnienia różnych reakcji narządów zwierząt, które otrzymały zastrzyk badanych leków. Zazwyczaj do testów biologicznych wykorzystuje się bocje i żaby.

Po wstrzyknięciu przysadki mózgowej bochenek zawsze daje wymierną, wyraźną reakcję. Określenie jednostki aktywności przysadki mózgowej ryb odbywa się za pomocą koncepcji jednostki bocji (v.u.) opracowanej przez B.N.

Jednostka Loacha- jest to ilość hormonu gonadotropowego niezbędna do spowodowania, 50-80 godzin po wstrzyknięciu, dojrzewania jaj i owulacji u samic bocianów zimowych w IV stadium dojrzałości o masie 35-45 g przy temperaturze wody 16-18° C w warunkach laboratoryjnych.

W celu określenia aktywności testowego preparatu przysadkowego w jednostkach Loach kilku grupom samic podaje się jednocześnie zastrzyki przysadkowe z różnymi dawkami przysadki mózgowej. Najniższa dawka, co spowodowało dojrzewanie i odpowiada jednostce bochenka. Wiedząc o tym, można porównać zawartość hormonu gonadotropowego w różnych przysadkach mózgowych.

Wykorzystanie bocji jako obiektu badawczego jest utrudnione ze względu na ograniczone rozmieszczenie ich w naturalnych zbiornikach wodnych.

Bardziej przystępnym obiektem są żaby. Można je łatwo pozyskać w wymaganej ilości o każdej porze roku. Pozytywną reakcją u żab jest pojawienie się ruchliwych plemników w kloace po wstrzyknięciu zawiesiny przysadki mózgowej do grzbietowych worków limfatycznych. Reakcja ta zachodzi bardzo szybko - po 40-50 minutach. To druga zaleta pracy z żabami w porównaniu z bocianami.

Samce żab odławia się późną jesienią w miejscach, w których gromadzą się w celu zimowania. Trzymane są w wodzie o temperaturze 1,5°C, przy małym przepływie i przy słabym oświetleniu.

Testowanie leku należy przeprowadzać co roku o tej samej porze. Tak więc w delcie Wołgi robią to w pierwszej połowie marca.

Żaby wyprowadza się ze stanu zimowego poprzez powolne podnoszenie temperatury wody i doprowadzanie jej po tygodniu do 16-18°C. Najlepsze wyniki badania daje temperatura 18-23°C.

Kontrolę przeprowadza się w następujący sposób. Najpierw wybiera się partie po 8-10 przysadek mózgowych, różniących się kolorem i wielkością. Następnie waży się je na wadze analitycznej z dokładnością do 0,1 mg. Odważony preparat uciera się w moździerzu, stopniowo zwilżając, aż do uzyskania jednorodnej kremowej konsystencji. Następnie do preparatu dodaje się roztwór soli fizjologicznej i zawiesina jest gotowa do wstrzyknięcia.

Wstrzyknięcie przeprowadza się jednocześnie u 5 żab. W sumie testuje się 3 grupy żab. Każdej grupie wstrzykuje się określoną dawkę: 0,2; 0,3 i 0,4 mg suchego preparatu przysadki mózgowej.

Wskaźnik aktywność biologiczna Preparat testowy przysadki mózgowej to minimalna dawka wagowa, która powoduje reakcję plemników u ponad połowy wstrzykniętych żab. Aktywność biologiczną leku oblicza się, dzieląc jednostkę przez wskaźnik wagowy minimalnej skutecznej dawki.

Jedna jednostka żab(tj.) to aktywność minimalnej dawki wagowej leku, która powoduje nasienie u samca żaby.

Acetonowany preparat przysadki mózgowej powinien charakteryzować się standardową, znaną wcześniej aktywnością, która wynosi 3,3 jednostki żabiej.

Stosowanie leku pozwoli na bardziej ekonomiczne wykorzystanie pobranego przysadki mózgowej. Ponadto w przypadkach, gdy po wstrzyknięciu przysadki mózgowej nie obserwuje się dojrzewania producentów, ułatwiona jest analiza przyczyn tego zjawiska.

Należy także pamiętać, że dawkę podawanego leku na jednostkę masy producentów należy obliczyć z uwzględnieniem aktywności biologicznej każdej partii przysadki mózgowej.

Oprócz powyższej metody oznaczania aktywności acetonowanej przysadki mózgowej istnieje kilka innych metod takiego badania. W szczególności B.F. Goncharov zaproponował zastosowanie systemu dojrzewania jaj poza organizmem w celu określenia jakości przysadki mózgowej. Kontrolę przeprowadza się w następujący sposób. Próbkę kawioru pobiera się sondą i umieszcza w roztworze fizjologicznym zawierającym 0,1% roztwór krystalicznej albuminy. Dodaje się tam również zawiesinę przysadki mózgowej. Jeśli samica jest przygotowana do dojrzewania, wówczas pęcherzyk embrionalny rozpuszcza się.

Zaletami proponowanej metody jest czułość, możliwość uzyskania dużego materiału cyfrowego oraz możliwość wykorzystania jej bezpośrednio w wylęgarniach ryb w sezonie pracy z producentami.

W przypadku tej metody dawkę wstrzykniętego przysadki mózgowej oblicza się w miligramach acetonowanego przysadki mózgowej na 1 kg masy producenta lub w miligramach na mężczyznę lub kobietę.

Prawidłowe dawkowanie w dużej mierze determinuje jakość powstałych produktów seksualnych. Jeżeli dawka będzie niewystarczająca, nie nastąpi dojrzewanie hodowców. Wraz ze zwiększoną dawką leku hormonalnego zmniejsza się jakość kawioru lub nasienia.

W niższych temperaturach (w zakresie temperatur tarła) do dojrzewania tarlików potrzebne są większe dawki leku, w temperaturach zbliżonych do górnej granicy temperatur tarła ilość leku hormonalnego maleje. Dojrzałym mężczyznom w porównaniu z kobietami należy podawać mniej leków hormonalnych.

Wylęgarnie jesiotrów otrzymują acetonowane przysadki mózgowe o określonej aktywności gonadotropowej. Jednak nie zawsze pozostaje ona stała. Kiedy przysadka mózgowa jest przechowywana przez ponad rok, jej aktywność gonadotropowa maleje. Proces pogarszania się jakości przysadki mózgowej zostaje spowolniony, gdy przechowuje się ją w hermetycznie zamkniętym pojemniku, w suchym pomieszczeniu, w niskiej temperaturze.

Zastrzyk przysadki mózgowej

Wysuszony przysadkę mózgową rozciera się tłuczkiem na proszek w czystym moździerzu szklanym lub porcelanowym, a następnie waży. wymagana dawka na wagach analitycznych lub torsyjnych dla każdej partii buhajów, którym podano szczepionkę, oddzielnie dla samic i samców.

Odważoną porcję dodaje się do roztworu fizjologicznego (6,5 g chemicznie czystej soli kuchennej rozpuszczonej w 1 litrze wody destylowanej) i jeszcze trochę mieli. Następnie do tej masy dodaje się kolejną porcję roztworu fizjologicznego w takiej ilości, aby na jednego producenta przypadało 2 cm3 zawiesiny. Następnie dokładnie wstrząsa się kilkakrotnie za pomocą strzykawki i przenosi do butelki z szeroką szyjką i szlifowanym korkiem.

Przed rozpoczęciem wstrzykiwania zawartość butelki należy kilkakrotnie dokładnie wymieszać. Zawiesinę wstrzykuje się w mięśnie pleców za pomocą strzykawki. Po wstrzyknięciu igłę należy ostrożnie usunąć. Miejsce nakłucia skóry uciska się palcem, a następnie delikatnie masuje. Należy to zrobić, aby uniknąć wycieku wstrzykniętego leku.

Gdy temperatura wody jest o 2-3°C niższa od temperatury tarła, dawkę przysadki mózgowej zwiększa się o 30-50%.

Zastrzyki do przysadki dają pozytywne rezultaty tylko wtedy, gdy producenci ukończą IV etap dojrzałości rozrodczej. Wskaźnikiem tego stanu komórek jajowych jest przemieszczenie ich istniejących jąder w stronę kanału (mikropylu), przez który plemnik przedostaje się do wnętrza komórki jajowej.

Czwarty etap u mężczyzn charakteryzuje się zakończeniem procesu tworzenia plemników. U takich samców przeważają dojrzałe, w pełni uformowane plemniki.

Dobre rezultaty uzyskuje się już po jednorazowym wstrzyknięciu acetonowanego leku. Czasami jednak nie są one wystarczająco skuteczne. Taka sytuacja ma miejsce, gdy stan ogólny producentów ulega pogorszeniu lub rozwój jaj nie jest całkowicie zakończony. W takiej sytuacji czasami wskazane jest wykonanie wielokrotnych wstrzyknięć małych dawek leku. Należy jednak zawsze pamiętać, że dawki preparatu przysadki mózgowej zwiększone w porównaniu do dawek potwierdzonych naukowo prowadzą do obniżenia jakości powstałych dojrzałych komórek rozrodczych. Wyjaśnia to fakt, że acetonowany proszek przysadki mózgowej zawiera również hormony, które nie są bezpośrednio potrzebne do dojrzewania komórek rozrodczych. W rezultacie, skutki uboczne ciało wchodzi w stan dużego napięcia (stresu).

Sukces zastrzyków przysadkowych zależy w dużej mierze od sposobu utrzymania hodowców. Na wszystkich etapach tej operacji – przed, w trakcie i po wprowadzeniu preparatu przysadki mózgowej do organizmu ryby – z samicami i samcami należy obchodzić się bardzo ostrożnie, aby zapobiec zranieniu. W zbiornikach przeznaczonych dla hodowców musi panować dobry reżim tlenowy; samice i samce powinny być trzymane osobno. Przed wstrzyknięciem przenosi się je do małych betonowych basenów lub klatek, w których tworzone są optymalne warunki zapewniające dojrzewanie produktów rozrodczych po wprowadzeniu do organizmu leku hormonalnego.

Określanie czasu dojrzewania producentów

Po wprowadzeniu przysadki mózgowej ryby rozpoczynają okres dojrzewania (do uzyskania dojrzałych jaj), którego czas trwania zależy od temperatury wody i stanu początkowego samic.

A. S. Ginzburg i T. A. Detlaf ustalili, że przy tej samej średniej temperaturze okres dojrzewania jest zawsze znacznie krótszy niż okres rozwoju embrionalnego (4-6 razy). Wynika z tego, że wraz ze wzrostem lub spadkiem temperatury odpowiednio zmienia się czas trwania okresów dojrzewania i rozwoju embrionalnego. Identyfikacja takiego wzorca umożliwiła A. S. Ginzburgowi i T. A. Detlaffowi skonstruowanie wykresów prawdopodobnych czasów dojrzewania samic jesiotra w różnych temperaturach w zależności od czasu trwania ich rozwoju embrionalnego.

Wykresy przedstawiają krzywe wskazujące przewidywany czas osiągnięcia dojrzałości u kobiet po wstrzyknięciu przysadki mózgowej. Korzystając z wykresów, można również określić czas oglądania samic i pobierania próbek, obliczając najpierw średnią temperaturę w okresie dojrzewania.

Obliczenia dokonuje się w następujący sposób. O godzinie 19:00 w wigilię dnia odbioru jaj i o godzinie 7:00 rano w dniu odbioru jaj obliczana jest średnia temperatura, począwszy od chwili wstrzyknięcia tarlaków. Potem dalej pozioma oś znajdź punkt odpowiadający średniej temperaturze w okresie dojrzewania i przywróć z niego prostopadłą, aż przetnie się z krzywymi. Punkt przecięcia z krzywą pokazuje, po ilu godzinach dojrzewają pierwsze samice. Otrzymaną liczbę godzin dodaje się do czasu wstrzyknięcia i określa się czas rozpoczęcia oglądania samic. Punkt przecięcia z krzywą pozwala w ten sam sposób określić moment dojrzewania wielu samic.

Korzystając z tego harmonogramu, można określić czas wstrzyknięcia zawiesiny przysadki mózgowej samicom jesiotra w celu uzyskania kawioru w czasie dogodnym do pracy. Dzięki temu ułatwia się współpracę z producentami, zmniejsza się liczba niezbędnych wizyt samic, poprawia się jakość kawioru i zmniejszają się straty powstałe w wyniku jego przejrzałości lub niedojrzałości.

Obliczając wymagany wskaźnik, najpierw określ średnią temperaturę na dzień przed wstrzyknięciem. Następnie na poziomej osi wykresu dojrzewania kobiet znajduje się punkt odpowiadający tej temperaturze i przywracana jest z niego prostopadła, aż przetnie się z krzywą. Z punktu przecięcia prostopadłą obniża się na oś pionową i na tej podstawie określa się liczbę godzin, jakie upłynną w danej średniej temperaturze od wstrzyknięcia do dojrzewania pierwszych samic. Obliczoną w ten sposób liczbę godzin odejmuje się od godziny rozpoczęcia dnia roboczego i uzyskuje się godzinę, w której należy zaszczepić samice.

Metodę określania stopnia dojrzałości gonad żeńskich bez otwierania ryby zaproponował także V.Z. Trusov. Metoda ta sprowadza się do pobrania kilku jaj z jajnika kobiety za pomocą sondy. Przenosi się je pęsetą do probówki z formaldehydem. Probówki przenosi się do pomieszczenia, w którym zainstalowany jest mikrotom zamrażający. Jaja układa się na stole w taki sposób, aby sekcje maszynki do golenia mikrotomu przechodziły przez bieguny zwierzęce i wegetatywne. Następnie jaja zalewa się wodą z pipety do oczu, po czym stół przykrywa się metalową nakrętką i skrawki zamraża się dodając dwutlenek węgla z balonu.

Skrawki wykonuje się do momentu pojawienia się rdzenia wyraźnie widocznego gołym okiem lub pod lupą. Jeśli leży blisko błon, wówczas stan gonady żeńskiej znajduje się w IV fazie dojrzałości.

Metoda określania stopnia dojrzałości gonad żeńskich zaproponowana przez V.Z. Trusova jest stosunkowo prosta, niezawodna i zajmuje niewiele czasu: analizę jednej próbki można przeprowadzić w ciągu 5-8 minut.

Dojrzewanie samic jest również monitorowane poprzez bezpośrednią obserwację. Kontrola nasila się w ciągu ostatnich sześciu godzin – najbardziej prawdopodobnego okresu dojrzewania w danej temperaturze.

Jeszcze prostszą, ekspresową metodę określania dojrzałości gonad u hodowców jesiotrów opracował prof. B. N. Kazansky, Yu. A. Feklov, S. B. Podushka i A. N. Molodtsov. Istota metody polega na tym, że za pomocą sondy pobiera się próbkę kawioru z tylnej części jajnika, a sondę wprowadza się do jamy ciała pod kątem 30°, co pozwala uniknąć kontaktu z ważnymi narządami. Bagnet posiada końcówkę wypełnioną jajami oraz pręt umożliwiający jego opróżnienie.

Całkowita długość sondy wynosi 125 mm, końcówka 65 mm, w tym część zaostrzona 20 mm. Zewnętrzna średnica pręta wynosi 4,5 mm. Sonda kończy się uchwytem umieszczonym prostopadle do pręta. Aby określić stopień ukończenia czwartego etapu dojrzałości, jaja wyekstrahowane sondą gotuje się przez 2 minuty. Stwardniałe jaja są cięte żyletką wzdłuż osi od słupa zwierzęcego do słupa wegetatywnego. Skrawki ogląda się pod lupą lub przez lornetkę. Stopień polaryzacji jaja zależy od położenia jądra względem bieguna zwierzęcia. Wskaźnik polaryzacji wyznacza się ze wzoru zaproponowanego przez Yu. A. Feklova: l = A/B, gdzie l jest współczynnikiem polaryzacji; A to odległość od rdzenia do powłoki; B to największa odległość wzdłuż osi od zwierzęcia do bieguna wegetatywnego.

Jak mniejsza wartość l, im bardziej spolaryzowane jest jajo i tym większe jest zakończenie IV etapu dojrzałości gonad. Największą polaryzację oocytu obserwuje się przy l = l/30: l/40.

Jeśli brzuch samicy po dotknięciu okaże się bardziej miękki niż przed wstrzyknięciem, oznacza to możliwe dojrzewanie jaj u tego osobnika. Aby się o tym przekonać, należy pod samicę podłożyć nosze do ryb z wodą, podnieść je i ustawić na kozłach. W tym czasie ryba wykonuje gwałtowne ruchy, a jeśli jaja są dojrzałe, można zobaczyć jaja wypuszczone na nosze. Gdy samica się uspokoi, należy ją przewrócić na bok i dotknąć jej brzucha. U osoby dojrzałej po masowaniu tylnej części brzucha kawior wypływa swobodnie strumieniem.

Zatem, jak zauważają A. S. Ginzburg i T. A. Detlaf, wskaźnikami otwierania się samic są miękki odwłok, jaja wyrzucane silnym strumieniem i tonące ściana jamy brzusznej kiedy kobieta wstaje.

Konieczne jest natychmiastowe pozyskanie jaj od w pełni dojrzałej samicy.

Uzyskanie dojrzałego kawioru

Prace nad uzyskaniem dojrzałych produktów rozrodczych, obejmujące zbiór, zapłodnienie i mycie jaj, prowadzone są na dziale operacyjnym, który zazwyczaj mieści się w warsztacie wylęgowym. Posiada sprzęt do pozyskiwania produktów rozrodczych taki jak wyciągarka, zacisk i lodówka (KX-6B), w której producenci są przechowywani bez kawioru i nasienia (kawior i nasienie są pozyskiwane przed dostarczeniem do punktu skupu) ). Na dziale operacyjnym znajdują się stoły produkcyjne o wymiarach 126x84x90 cm typu SPSM-4.

Dojrzałą samicę ogłusza się mocnym uderzeniem w nos drewnianym młotkiem, po czym wykrwawia się ją do sucha poprzez przecięcie tętnicy ogonowej lub skrzelowej, przemywa wodą i suszy. Aby zapobiec przedostawaniu się krwi do misy z kawiorem, miejsce nacięcia zawiązuje się bandażem. Gotową do otwarcia rybę podnosi się za głowę przez poprzeczkę lub blok i zabezpiecza. Brzuch nacina się od dołu do góry, od otworu płciowego na głębokość 15-20 cm. Nacięcie wykonuje się płytko i lekko z boku od linii środkowej. Aby uniknąć utraty jaj, ogon samicy trzyma się nad miednicą. Część dojrzałego kawioru swobodnie spływa jego krawędzią do basenu. Następnie odwłok przycina się do płetw piersiowych, a pozostałe, swobodnie oddzielone jaja przenosi się do miednicy. Do zapłodnienia można również wykorzystać łagodne jaja znajdujące się w jajowodach.

Ilość uzyskanych jaj zależy od wagi samicy.

Jaja od różnych samic nie są mieszane. Wszystkie operacje z kawiorem przeprowadzane są z zachowaniem szczególnej ostrożności. Kawior można zbierać wyłącznie w misach z nienaruszoną emalią. W misce o pojemności 12-15 litrów umieszcza się nie więcej niż 2 kg kawioru.

Zapłodnione są wyłącznie pełnoprawne, dojrzałe jaja, które muszą być identyfikowalne.

Niedojrzałe jaja różnią się od dojrzałych tym, że mają ten sam kolor we wszystkich obszarach. Dojrzałe jaja bardzo powoli odbarwiają wodny roztwór błękitu metylenowego. Rozwiązanie to w ogóle nie odbarwia jaj niedojrzałych, natomiast jaja przejrzałe odbarwiają się znacznie szybciej niż dojrzałe. Ta metoda określania jakości hodowlanej kawioru z jesiotra została opracowana przez M. F. Verniduba, profesora nadzwyczajnego Leningradzkiego Uniwersytetu Państwowego. Sprowadza się to do następującej procedury: 2 cm 3 kawioru (bez płynu wnękowego) umieszcza się w butelce lub szczelnie zamkniętej probówce wypełnionej 10 cm 3 świeżo przygotowanego roztworu błękitu metylenowego (jedna kropla 0,05% wodnego roztworu farba na 10 cm 3 wody), kilka razy Wstrząśnij raz i uwzględnij czas, w którym roztwór odbarwi się.

W niektórych przypadkach odbarwienie nie następuje w zwykłym czasie dla kawioru tej jakości.

Określanie gotowości jaj do zapłodnienia

L. T. Gorbaczowa, pracownica Instytutu Badawczego Rybołówstwa Azow, zaproponowała ocenę gotowości jaj do zapłodnienia w fabryce na podstawie szybkości, z jaką skorupki jaj stają się lepkie po zapłodnieniu.

Aby określić, kiedy przystąpić do inseminacji jaj, które zostały już usunięte z jamy ciała samicy, pobiera się 100-150 jaj, inseminuje plemnikiem i określa czas, w którym jaja znajdujące się w próbce przylegają do szalki Petriego. Następnie, według specjalnego harmonogramu, ustala się termin, w którym należy dokonać inseminacji wszystkich jaj. W przypadku kawioru z jesiotra za najlepszy stan do zapłodnienia uważa się taki, w którym co najmniej 90–95% wszystkich zapłodnionych jaj skleja się w ciągu 9–16 minut; w przypadku kawioru sevruga stan ten odpowiada czasowi 6-10 minut. Taki kawior rozwija się normalnie.

Przejrzały kawior z jesiotra zaczyna się kleić po 4-6 minutach, a jesiotr gwiaździsty - po 2-4 minutach. Takie jaja powodują zwiększoną śmiertelność w okresie inkubacji.

Do nawożenia stosuje się wyłącznie kawior wysokiej jakości, którego wskaźnikami są:

• obecność na biegunie embrionalnym plamki innego koloru niż druga połowa jaja;
• jaja o regularnym zaokrąglonym kształcie i jednakowej wielkości oraz zabarwione blastomery powstałe po pojawieniu się dwóch bruzd bruzdkowych;
• pojawienie się po 6-12 minutach u jesiotra i po 5-10 minutach u jesiotra gwiaździstego wąskiej szczeliny pomiędzy zewnętrzną skorupą a jajem w próbce kawioru szybko wypłukanego z płynu z jamy (w jajach przejrzałych proces ten rozpoczyna się wcześniej, w niedojrzałych jajka - później);
• pewna masa jaj; 1 g dojrzałego kawioru bieługi powinien zawierać 35-40 jaj, jesiotr - 45-50 jaj, jesiotr gwiaździsty - 75-90 jaj.

Jeśli znajdziesz błąd, zaznacz fragment tekstu i kliknij Ctrl+Enter.

Rozdział III

Płeć i dojrzewanie

Charakterystyka stosunku płci

5) skład płci w okresie migracji;

6) skład płciowy w okresie tarła;

7) skład płciowy w okresie zimowania;

8) skład płciowy w połowach przy użyciu różnych narzędzi połowowych;

9) liczbę samic, które można wykorzystać do zbioru kawioru na potrzeby hodowli ryb i przygotowania kawioru przeznaczonego do sprzedaży;

10) określenie liczby samic składających tarło w celu obliczenia współczynnika powrotów.

Konieczne jest rejestrowanie najmniejszych i największych rozmiarów, masy ciała i wieku dojrzałych płciowo samców i samic.

Etapy dojrzałości gonad i ocena porównawcza

oddzielne skale dojrzałości

Stopień dojrzałości produktów rozrodu u poszczególnych gatunków ryb jest określany w różny sposób. Istnieje wiele schematów określania stopnia dojrzałości płciowej. Ale nie ma jednolitości we wzorach nawet w odniesieniu do tego samego gatunku ryb. Zagadnienie to nie jest dostatecznie poruszone, choć wiele już zrobili zwłaszcza badacze rosyjscy: Vukotic (1915), Kiselevich (1923 aib), Filatov i Duplakov (1926), Nedoshivin (1928), Meyen (1927, 1936, 1939). , 1944), Kułajew (1927, 1939), Trusow (1947, 1949), Łapitski (1949). Cenne materiały na ten temat znajdują się w artykułach wielu naszych naukowców: Berga, Dryagina, Tichoja, Wotinowa, Naumowa itp.

Jednocześnie tarło ryb

Schemat określania dojrzałości produktów rozrodczych ryb, pierwotnie ustalony przez najstarszą instytucję ichtiologiczną w naszym kraju - Astrachańskie Laboratorium Ichtiologiczne (obecnie CaspNIRKH), został opisany przez K. A. Kiselevicha (1923) w jego „Instrukcjach obserwacji biologicznych”.

Schemat określania dojrzałości gonad według Kiselevicha

Etap I. Niedojrzałe osobnikimłodociane. (Terminy łacińskiejuniorzy(liczba mnoga-młodzież) Ijuvenalis(liczba mnoga-młodociane) mają różne znaczenia: pierwsze wśród Rzymian odnosiło się do organizmów młodych, ale już dojrzałych (w odniesieniu do osoby powyżej 20. roku życia); drugi dotyczy organizmów adolescencja. Zatem w przypadku niedojrzałych ryb bardziej poprawne jest użycie tego terminu młodociane; stąd etap młodzieńczy (a nie młodzieńczy). Gonady są nierozwinięte, ściśle przylegają do wewnątrzścian ciała (po bokach i poniżej pęcherza pławnego) i są reprezentowane przez długie, wąskie sznurki lub wstążki, dzięki którym nie można określić płci na podstawie wzroku.

Etap II. Dojrzewanie osobników lub rozwój produktów rozrodczych po tarle. Gonady zaczęły się rozwijać. Na sznurach tworzą się ciemne zgrubienia, w których można już rozpoznać jajniki i jądra. Jaja są tak małe, że nie są widoczne gołym okiem. Jajniki różnią się od jąder (mleka) tym, że wzdłuż tych pierwszych, po stronie zwróconej do środka ciała, biegnie dość grube i natychmiast zauważalne naczynie krwionośne. Na jądrach nie ma tak dużych naczyń. Gonady są małe i nie wypełniają jam ciała.

Etap III. Osobniki, których gonady, choć dalekie od dojrzałości, są stosunkowo rozwinięte. Jajniki znacznie zwiększyły swój rozmiar i wypełnienie 1 /w do 1 / 2 całą jamę brzuszną i są wypełnione małymi, nieprzezroczystymi, białawymi jajami, wyraźnie widocznymi gołym okiem. Jeśli przetniesz jajnik i zeskrobujesz końce nożyczek wzdłuż odsłoniętych jaj, trudno je oderwać od wewnętrznych przegród narządu i zawsze tworzą grudki składające się z kilku kawałków.

Jądra mają bardziej poszerzoną część przednią i zwężają się ku tyłowi. Ich powierzchnia jest różowawa, a u niektórych ryb czerwonawa ze względu na dużą liczbę małych rozgałęzionych naczyń krwionośnych. Po naciśnięciu nie można odciągnąć płynnego mleka z jąder. Kiedy jądro jest przecięte poprzecznie, jego krawędzie nie są zaokrąglone i pozostają ostre. Ryby pozostają w tym stadium przez długi czas: wiele gatunków (karp, leszcz, płoć itp.) - od jesieni do wiosny następnego roku.

Etap IV. Osoby, u których narządy płciowe osiągnęły prawie maksymalny rozwój. Jajniki są bardzo duże i zapełnione 2 / 3 całą jamę brzuszną. Jaja są duże, przezroczyste i wypływają po naciśnięciu. Podczas przecinania jajnika i skrobania nacięcia nożyczkami, jaja są zeskrobywane jedno po drugim. Jądra są białe i wypełnione płynnym mlekiem, które łatwo wypływa po naciśnięciu brzucha. Po wykonaniu przekroju poprzecznego jądra jego krawędzie są natychmiast zaokrąglone, a przekrój wypełniony płynną zawartością. Ten etap u niektórych ryb jest krótkotrwały i szybko przechodzi w następny.

Etap V Osoby płynne. Kawior i mlecz są na tyle dojrzałe, że płyną swobodnie nie kroplami, a strumieniem pod najmniejszym ciśnieniem. Jeśli trzymasz rybę w pozycji pionowej za głowę i nią potrząsasz, kawior i mleko wypływają swobodnie.

Etap VI. Rozrodzone osobniki. Produkty rozrodcze są całkowicie zmiecione. Jama ciała jest daleka od wypełnienia narządy wewnętrzne. Jajniki i jądra są bardzo małe, zwiotczałe, ze stanem zapalnym i mają kolor ciemnoczerwony. 11Rzadko w jajniku pozostaje niewielka liczba małych jajeczek, które ulegają degeneracji tłuszczowej i są wchłaniane. Po kilku dniach stan zapalny ustępuje, a gonady wchodzą w fazę II-III.

Jeżeli produkty rozrodcze znajdują się na etapie pośrednim pomiędzy dowolnymi dwoma z sześciu opisanych etapów, lub niektóre produkty są bardziej rozwinięte, inne mniej, lub gdy obserwatorowi trudno jest dokładnie wskazać etap dojrzałości, wówczas jest to sygnalizowane przez dwie liczby połączone myślnikiem, ale jednocześnie na pierwszym planie znajduje się etap, do którego produkty rozrodcze są bliżej rozwoju. Na przykład: III-IV; IV-III; VI-II itd. Podstawy tego schematu zawarte są w schematach wszystkich kolejnych autorów.

Skala dojrzałości płoci i leszcza (wg V. A. Mviena i S. I. Kulaeva)

Samice płoci i leszcza (ta skala nie dotyczy leszcza składającego tarło porcyjne)

Etap I (młodzieńczy). Płeć nie widać gołym okiem. Gonady mają wygląd cienkich, przezroczystych, szklistych pasm. Na powierzchni naczynia krwionośne są albo całkowicie nieobecne, albo bardzo słabo widoczne. W rozszczepionym gruczole, przy małym powiększeniu, pod mikroskopem widoczne są pojedyncze jaja.

Ten etap występuje u bardzo młodych osobników w wieku około 1 roku.

Etap II. Jajniki mają wygląd przezroczystych, szklistych pasm o żółtawo-zielonkawym kolorze. Wzdłuż jajnika biegnie cienkie naczynie krwionośne z bardzo małymi rozgałęzieniami. Jaja można odróżnić gołym okiem lub za pomocą szkła powiększającego. Są ściśle do siebie dopasowane i mają kształt nieregularnego wielościanu z zaokrąglonymi narożnikami. Procent masy jajników do masy całej ryby wynosi średnio 0,77 dla płoci i 1,21 dla leszcza.

Etap III. Jajnik ma okrągły kształt, lekko rozszerzający się przy głowie. Na całym jajniku gołym okiem widoczne są jaja o nierównej wielkości i zróżnicowanym kształcie (jak w stadium II).

Naczynia krwionośne zlokalizowane wzdłuż jajnika są dobrze rozwinięte i mają liczne rozgałęzienia. Procent masy jajnika do masy całego ciała ryby wynosi średnio 3,26 dla płoci i 4,1 dla leszcza.

Etap III u ryb występuje od końca sierpnia do początku października.

Etap IV. Jajnik znacznie zwiększył swoją objętość i zajmuje większość jamy brzusznej. Jaja mają nieregularny, wielopłaszczyznowy zaokrąglony kształt i ściśle przylegają do siebie.

Kiedy błona jajnika ulega zniszczeniu, jaja przyjmują kształt kulisty, ponieważ nie podlegają już ciśnieniu wewnątrz jajnika. Jaja są ściśle trzymane w tkankach jajnika. Pod koniec IV etapu (wiosną) jądro w jajach jest widoczne gołym okiem w postaci małej plamki. Jajnik ma gęstą skorupę i jest elastyczny. Naczynia krwionośne z licznymi rozgałęzieniami są bardzo rozwinięte. Etap IV rozpoczyna się pod koniec września lub w połowie października i trwa do kwietnia-maja, tj. przed tarłem. Udział masy jajników w masie ciała całej ryby jesienią wynosi średnio 8,3 dla płoci, wiosną 20,9, a dla leszcza 11,6.

Przejście do etapu V (etap pełnej dojrzałości) charakteryzuje się pojawieniem się najpierw pojedynczych przezroczystych jaj, a następnie małych grup dojrzałych, przezroczystych jaj. Następnie całe odcinki jajnika są wypełnione dojrzałymi jajami. Pierwsze pojawienie się przezroczystych jaj w jajniku wskazuje, że pełna dojrzałość nastąpi w najbliższej przyszłości. Ten stan jajników jest oznaczony jako IV - V. Etap przejściowy IV - V jest krótkotrwały.

Etap V. Jajnik osiąga pełną dojrzałość i jest wypełniony płynnymi jajami, uwalnianymi przy najmniejszym nacisku na odwłok i nawet wtedy, gdy ryba jest opuszczona ogonem w dół. Jaja są przezroczyste i mają regularny, kulisty kształt.

Na samym początku etapu V jaja, choć przezroczyste, po naciśnięciu są trudne do uwolnienia. Potem przychodzi pełna dojrzałość.

Etap V u płoci i leszcza przypada na okres od kwietnia do maja lub na początku czerwca.

Etap VI. Jajnik znacznie się zmniejszył, ma zwiotczały wygląd, jest miękki w dotyku i ma fioletowo-czerwony kolor. Skorupa jest gęsta i mocna. W jajniku znajdują się rzadkie niezarodkowane jaja, często białawe. Procent masy jajnika do masy całego ciała ryby wynosi średnio 1,3 dla płoci i leszcza.

Przejście z etapu VI do II następuje stopniowo w ciągu 1-1,5 miesiąca. W miarę zanikania pustych pęcherzyków i jajeczek pozostałych po tarle, jajnik stopniowo zmienia kolor z fioletowo-czerwonego na najpierw różowy, następnie różowawo-szklisty, a na koniec przybiera żółtawo-zielonkawy kolor.

U ryb ponownie dojrzewających po etapie VI rozpoczyna się etap III, a nie II.

Samiec płoci i leszcza

Etap I. To samo co w przypadku kobiet.

Etap II. Jądra to dwa cienkie, zaokrąglone sznury, prawie tej samej długości, co u dojrzałych jąder. Są mętne, bladoróżowe lub szarawe. Naczynia krwionośne są trudne do zobaczenia. Masa jąder jest bardzo mała i wynosi średnio 0,34% masy ryby u płoci i 0,25% u leszcza. Etap II przypada na przełom lipca i sierpnia.

Etap III. Na początku III etapu (zwykle wrzesień) jądra są nieco bardziej okrągłe niż w poprzednim etapie, różowo-szare i elastyczne. Stanowią one średnio 0,9% masy ciała płoci i 0,7% leszcza.

W okresie październik-listopad jądra są matowożółte, ich objętość znacznie wzrasta, a masa jąder u płoci wynosi już 2,25%, a u leszcza 1,5% masy ciała. W lutym - marcu jądra osiągają maksymalny rozmiar, stają się elastyczne i nabierają różowawego śluzu i biały kolor. Mleko nie zostało jeszcze wypuszczone podczas naciskania na brzuch. Nawet przy przecięciu jąder nie wystają i nie pozostawiają śladów na brzytwie. Krawędzie cięcia nie łączą się i pozostają spiczaste. Masa gruczołu osiąga maksimum i wynosi średnio 7% masy ciała płoci i 2,5% leszcza. Ten etap trwa prawie cztery miesiące, po czym radykalnie zmienia się kolor, objętość i masa gruczołu.

Etap IV. Jądro wchodzi w okres dojrzewania. Gruczoł makroskopowy jest prawie taki sam jak w poprzednim etapie, ale ma delikatnie biały kolor i nie jest tak elastyczny. Przewód nie jest jeszcze wypełniony mlekiem. Po naciśnięciu gruczołu lub brzucha ryby pojawia się gęsta kropla mleka. Po przecięciu jądra krawędzie nacięcia łączą się i uwalniane jest gęste mleko. Masa gruczołu jest taka sama lub nieco mniejsza niż na poprzednim etapie.

Etap IV przypada na kwiecień.

Etap V. Jądra są w stanie pełnej dojrzałości i są dwoma spuchniętymi, elastycznymi, miękkimi ciałkami, jednolicie drobnobiałymi, lekko kremowymi. Po stronie brzusznej znajduje się cienka, pęknięta nić naczynia krwionośnego jamy brzusznej. W miarę uwalniania plemników jądra stają się znacznie cieńsze, bardziej miękkie i zwiotczałe. Zmiana ta jest szczególnie widoczna w okolicy ogonowej, gdzie jądra mają brązowo-różowy kolor. Na początku etapu kanał wystaje bardzo ostro, który pod koniec etapu staje się zwiotczały i różowawy, ale pozostaje wyraźnie widoczny. Na początku etapu mleko wypływa z samej nieotwartej ryby, na końcu mleko nadal wypływa po naciśnięciu. Masa jąder na początku stadium u płoci wynosi około 7%, u leszcza 2,5%, na końcu stadium u płoci 3,4%, a u leszcza 1%.

Etap V u płoci i leszcza przypada na kwiecień-czerwiec.

Etap VI (wybicie). Jądra są całkowicie wolne od mleka i składają się z dwóch cienkich, wiotkich pasm. W Przekrój są kanciaste, różowe lub brązowawe. Naczynia krwionośne są słabo widoczne. Masa jąder gwałtownie maleje i wynosi zaledwie 0,5% masy ciała u płoci i 0,4% u leszcza.

Etap VI leszcza występuje w lipcu.

Skala dojrzałości okoni (wg Meyena i Kulaeva, ze skrótami)

Żeński okoń

Etap I (młodzieńczy). Jajnik jest pojedynczy i stanowi mały, przezroczysty, wydłużony korpus, w którym gołym okiem nie można rozróżnić poszczególnych jaj. Ma barwę bladożółtą z zielonkawym odcieniem, jest szklisty-przezroczysty. Po powierzchni biegną małe naczynia krwionośne z małymi rozgałęzieniami.

Stadium młodzieńcze trwa do połowy drugiego lata życia okonia.

Etap II. Jajnik jest szklisty-przezroczysty. Jaja są bardzo małe, widoczne gołym okiem, czasem przez szkło powiększające. Kolor jest bladożółty z zielonkawym odcieniem.

Etap II występuje u osobników niedojrzałych w połowie drugiego lata życia i trwa do połowy następnego roku. U osobników dojrzałych płciowo rozpoczyna się po zakończeniu etapu VI i trwa do sierpnia; u takich osobników należy go określić jako II-III.

Procent masy jajnika w stosunku do masy całego ciała ryby wynosi średnio 2,1%.

Etap III. Jajnik traci przezroczystość. Wyraźnie widoczne są pojedyncze okrągłe jaja, ściśle osadzone w tkance jajnika. Kolor jest bladożółty. III etap dla okoni rozpoczyna się w sierpniu i trwa do października. Procent masy jajnika w stosunku do masy całego ciała ryby wynosi średnio 3,5%.

Etap IV. Jajnik zajmuje większą część jamy brzusznej. Jaja mają nieregularny, wielopłaszczyznowy kształt (w przypadku zniszczenia błony jajnikowej stają się kuliste) i są ściśle połączone z tkankami jajnika. Żółty kolor. Etap IV u okoni rozpoczyna się w październiku i trwa do połowy marca lub początku kwietnia. Udział masy jajników w masie wszystkich ryb w październiku wynosi średnio 8,8%, w lutym 13%, w marcu-kwietniu - 26,4%.

Etap V Kawior jest płynny i uwalnia się za jednym razem. Etap V przypada na koniec marca lub kwiecień.

Etap VI. Jajnik był znacznie ściśnięty z powodu zapadnięcia się ścian. Miękki w dotyku. Kolor czerwono-szary. Wyściółka jajnika była znacznie ściśnięta i pogrubiona. Po rozcięciu jajnika gołym okiem widoczne są poprzeczne płytki zawierające jaja. Niezmiecione jaja występują w małych ilościach. Procent masy jajnika do masy całej ryby wynosi 2,7%. Etap VI u okoni trwa średnio miesiąc po tarle.

Samiec okonia

Etap I (nieletni). Gonada ma postać dwóch bardzo cienkich i krótkich, szklistych, bladoróżowych pasków.

Etap II. Jądra mają wygląd dwóch cienkich, zaokrąglonych sznurków i mają matowy, bladoróżowy kolor. Ich długość wynosi 1/3 rozwiniętego jądra. Masa jąder jest bardzo mała i stanowi średnio 0,2% całkowitej masy ciała ryby.

Etap II u ryb występuje w czerwcu.

Etap III. Jądra są elastyczne, różowo-szare, mają zwiększoną objętość i zajmują połowę jamy ciała. Na początku III etapu (lipiec) ich waga wynosi 0,35% całkowitej masy ryb, później (do początku sierpnia) -0,7% i ostatecznie pod koniec etapu (do grudnia) - 2%.

W tym czasie jądra osiągają prawie długość dojrzałego gruczołu i wyglądają jak elastyczne, dość grube sznury o bladożółtym, a nawet prawie białym kolorze. Nie ma jeszcze mleka. Podczas cięcia krawędzie nie strzępią się i pozostają ostre. Na maszynce nie pozostały żadne ślady mleka. Waga średnio 2% wagi ryby.

Etap IV (dojrzewanie). Jądra są bardzo duże, osiągają prawie normalną wielkość dojrzałego gruczołu i mają mlecznobiały kolor. Zajmują całą jamę ciała. Po zacięciu brzytwą pozostają smugi mleka, a czasem (na nieco późniejszym etapie) po naciśnięciu brzytwą pojawia się gęsta kropla mleka. Masa jąder wynosi od 6 do 8% masy ciała ryby.

Etap IV u okoni występuje od grudnia do początków kwietnia.

Etap V. Jądra są w stanie pełnej dojrzałości, osiągają maksymalny rozmiar, są bardzo spuchnięte, o gładkiej, napiętej, elastycznej powierzchni, delikatnie białej barwy. Po naciśnięciu brzucha ryby wypływa obficie płynne mleko. Masa gruczołu osiąga maksimum i stanowi 9% masy ryby.

W miarę wypływu mleka jądra zauważalnie się zapadają; ich objętość jest w przybliżeniu równa 1/4 ich objętości w fazie dojrzałości; stają się zwiotczałe, pomarszczone, różowe, a nawet czerwone w części ogonowej. Po sprasowaniu mleko pozostaje nienaruszone. wystaje. Masa gruczołu gwałtownie spada i osiąga średnio 1,6% masy ryby.

Etap V okonia przypada na okres kwiecień – maj.

Etap VI (wybicie). Jądra są całkowicie wolne od mleka i składają się z dwóch cienkich i wiotkich sznurków. Są znacznie skrócone, zbliżają się wielkością i kształtem do stadium II, mają brązowawą barwę. Waga również zbliża się do etapu II i wynosi średnio 0,6% masy ryby.

Etap VI u samców okonia przypada na koniec maja.

Stopień dojrzałości płciowej ryb określano wcześniej gołym okiem. Zasadniczo jest to najłatwiejsza, najszybsza i najbardziej praktyczna metoda, ale nie daje jasnego obrazu pełnego cyklu rozwoju gonad. Dlatego też zaczęły pojawiać się prace, w których stopień dojrzałości jaj i plemników rybich opisuje się na podstawie badania mikroskopowego. W schemacie Meyena dla okonia, płoci, leszcza itp. uwzględniono element mikroskopowy. Jeszcze ważniejsze jest podłoże histologiczne skal określających dojrzałość płciową ryb. Podobną skalę zaproponował V. Z. Trusov (1949a) dla sandacza. Wymienia szczegółowo objawy widoczne gołym okiem, znaki widoczne pod lupą i objawy histologiczne.

I. I. Lapitsky (1949) jako pierwszy zaproponował skalę dojrzałości produktów rozrodczych siei, uwzględniającą cechy makroskopowe i mikroskopowe. Skala Lapitsky'ego jest napisana bardzo wyraźnie i jest całkiem odpowiednia do pracy w terenie. Autor nazywa swoją skalę „komercyjną”.

Skala dojrzałości produktów płciowych, siei ludogi (wg Lapickiego ze skrótami)

Etap I (nieletni). Jajniki w postaci dwóch wałków o długości 1-1,5cm, ciągnące się w postaci nitkowatych sznurków po bokach pęcherza pławnego. Płeć nie widać gołym okiem. Ale pod lupą lub przy małym powiększeniu mikroskopu jaja są widoczne. Jajnik różni się od jądra obecnością dużego naczynia krwionośnego i struktury blaszkowatej. Gonady są bladoróżowe. Ten etap trwa do połowy drugiego roku życia siei (1+).

Etap II. Jajnik w postaci dwóch podłużnych sznurów o długości 3-5cm, zaokrąglone na głowie i mocno zwężające się na ogonie. Kolor jest jasnoróżowy lub lekko pomarańczowy. Naczynie krwionośne biegnące wzdłuż gruczołu ma wiele małych rozgałęzień. Jaja są widoczne gołym okiem. Opisane objawy II stopnia są charakterystyczne dla osobników, które nie osiągnęły jeszcze dojrzałości płciowej, tj. nigdy nie brały udziału w tarle i etap ten trwa do czwartego roku życia (3+). U samic, które osiągnęły dojrzałość płciową i brały już udział w tarle, po wypuszczeniu jaj rozpoczyna się etap II, makroskopowo nie do odróżnienia od opisanego (odróżnialny histologicznie).

Etap III. Jajniki zajmują od 0,50 do 0,75 długości jamy ciała. Jaja są wyraźnie widoczne gołym okiem. Duże jaja są jasnopomarańczowe, małe jasnopomarańczowe lub białawe. Płytki jajnikowe jajnika można łatwo od siebie oddzielić, a na każdej płytce widoczne są naczynia krwionośne.

Czas trwania etapu: od początku lutego do początków – połowy października.

Etap IV. Jajniki zajmują całą jamę ciała. Jaja są duże, ale wśród dużych widać małe jaja.

Czas trwania etapu nie przekracza 15-20 dni (połowa października - początek listopada).

Etap V Okres stanu płynnego produktów rozrodczych.

Etap VI. Jajnik ma postać dwóch zwiotczałych, pomarszczonych płytek o fioletowo-czerwonym kolorze. Jest wiele małych jaj, a czasami można znaleźć również duże jaja niezarodzone.

Czas trwania etapu: 1,5-2 miesiące (pierwsza połowa listopada - grudzień).

Ryba składająca tarło porcja

Wielu badaczy zauważyło, że u niektórych ryb okres tarła trwa długo, a u samic w trakcie tarła wielkość jaj jest różna. Ale takie fakty były wcześniej brane pod uwagę albo jako zbliżanie się pojedynczych stad tego samego gatunku, albo też mniejsze jaja w ogóle nie były liczone w ilości do złożenia w bieżącym roku. Następnie stwierdzono, że istnieją ryby z tarłem jednorazowym i ryby z tarłem częściowym, czyli innymi słowy ryby składające tarło jednocześnie i ryby składające tarło porcyjne. Według P. A. Dryagina istnieją gatunki ryb o cechach przejściowych w charakterze tarła (Dryagin, 1949).

K. A. Kiselevich ustalił tarliska śledzia kaspijskiego i w związku z tym zaproponował następny schemat określenie etapów dojrzałości ich gonad (Kiselevich, 19236).

Etapy dojrzałości gonad śledzi kaspijskich (wg Kiselevicha)

K. A. Kiselevich zwraca uwagę, że tarło u śledzia kaspijskiego nie następuje natychmiast, ale w trzech etapach. Najpierw składana jest jedna porcja jaj, a pozostałe niedojrzałe jaja w III stadium pozostają w jajniku i stopniowo dojrzewają w ciągu jednego do półtora tygodnia, przechodząc przez stadia IV i V. Kiedy druga porcja zrodzony; następnie ostatnia, trzecia porcja w stadium III pozostaje w jajniku, który dojrzewa w tym samym okresie i zostaje wymieciony. Dopiero potem ponownie następuje pełny etap VI.

Aby wskazać, że pierwsza porcja kawioru została już zmieciona, przed oznaczeniem dojrzałości drugiej porcji kawioru w nawiasie wpisano Roman VI; np.: (VI) - IV oznacza, że ​​pierwsza część jaj została złożona, a druga jest w stadium IV. Jeżeli pierwsze dwie części zostały już zmiecione, wówczas w nawiasach umieszcza się dwie szóstki. Na przykład (VI-VI)-III lub (VI-VI)-V: pierwszy oznacza, że ​​ryba złożyła ikrę w dwóch porcjach, a trzecia jest w stadium III; druga oznacza, że ​​dwie części zostały zmiecione, a trzecia znajduje się w fazie przepływu. Zatem cały okres rozwoju produktów rozrodczych i tarła śledzia będzie wynosić:

1) niedojrzały (juvenales), etap I;

2) pierwsza porcja kawioru, etapy: II, III, IV, V, VI-III;

3) druga porcja kawioru, etapy: (VI)-III, (VI)-IV, (VI)-V, (VI)-VI-III;

4) trzecia porcja kawioru, etapy: (VI, VI)-III, (VI, VI)-IV, (VI, VI)"-V, (VI, VI) lub po prostu VI, potem znowu etap III, itd. D.

Rozpoznanie pierwszej, drugiej i trzeciej części jest dość trudne i możliwe tylko po pewnych umiejętnościach. Aby to ułatwić, podano następujące instrukcje:

a) Pierwsza porcja kawioru zawsze wypełnia całą jamę ciała i rozszerza brzuch; jądra są duże i grube. W stadium IV wśród dojrzałych przezroczystych jaj wyraźnie widoczne są małe, nieprzezroczyste, jaśniejsze niedojrzałe jaja. Czasem wśród jaj gołym okiem widać dwie grupy – większą i mniejszą. Pod lupą różnice te są bardzo wyraźnie widoczne.

b) Druga porcja kawioru, nawet w okresie pełnej dojrzałości, nie wypełnia już całej jamy ciała, w której wydaje się, że jest pustka. Brzuch nie rozszerza się tak bardzo; jajniki, choć tej samej długości co za pierwszym razem, nie są już tak grube i obszerne. W stadium IV wśród dojrzałych jaj widoczne są także małe, ale jest ich zauważalnie mniej i wszystkie są tej samej wielkości.

c) Trzecia część jeszcze mniej wypełnia jamę ciała. Brzuch nie jest opuchnięty, jajniki są długie, ale stosunkowo cienkie. W stadiach IV i V wśród dojrzałych jaj nie widać już małych, niedojrzałych.

U samców poszczególne okresy tarła są jeszcze mniej wyraźne i znacznie trudniej je rozróżnić. Jedynym wskazaniem może być stopień opróżnienia jąder:

a) w pierwszym okresie całe jądro ma prawie taką samą szerokość na całej długości;

b) w drugim okresie tylna trzecia część jądra jest już opróżniona, ale przednie części są nadal szerokie i mięsiste;

c) w trzecim okresie tylko przedni koniec jądra jest mięsisty i szeroki, natomiast tylna część jest pusta i wygląda jak rurka.

Generalnie u samców ogólny obraz dojrzałości jąder jest mocno zamazany faktem, że przy różnym stopniu ich dojrzałości można wycisnąć co najmniej jedną kroplę mleka. W okresie tarła wyciska się więcej mleka, a mniej w przerwie pomiędzy dwiema porcjami.

Pełną skalę dojrzałości produktów rozrodczych śledzia, stosowaną w Wołga-Kaspijskiej Stacji Rybackiej, podaje instrukcja wydana przez V. A. Meyena (1939). Wyróżnia się sześć etapów dojrzałości: I-dojrzewanie, II-etap spoczynku (gonady osiągnęły normalne rozmiary u osobników dojrzałych, ale nie wykształciły się jeszcze produkty rozrodcze), III-etap wykształconych produktów rozrodczych, IV-etap dojrzewania, V - produkty płciowe są w pełni dojrzałe i VI - faza cięcia.

P. A. Dryagin (1939) opracował schemat wyznaczania etapów dojrzałości płciowej karpiowatych, które odbywają tarło porcjowane. Schemat P. A. Dryagina dla uklei jest następujący:

Cyfry rzymskie oznaczają etapy dojrzałości kawioru według ogólnie przyjętego sześciopunktowego schematu; cyfry arabskie wskazują kolejność porcji (krojenia).

V. A. Meyen (1940) zaleca także badanie makroskopowe jajników pod kątem następujących cech: stosunek masy gonad do masy ciała całej ryby, stopień przezroczystości całego jajnika i poszczególnych jaj, widoczność jaj gołym okiem, widoczność jądra jaja gołym okiem, stopień jasności wydzieliny produktów rozrodczych i ogólny kształt gonad. Ponadto należy wskazać kolor gonad. cechy charakterystyczne ich błony, elastyczność gonad i stopień rozwoju naczyń krwionośnych.

Wiele przydatnych informacji na temat cykli rozrodczych ryb można znaleźć w pracach prof. PA Dryagina (1949, 1952 itd.).

Podane skale określania dojrzałości płciowej ryb (oprócz tych skal istnieją inne) nie charakteryzują dostatecznie jednoznacznie rzeczywistego stanu produktów płciowych poszczególnych gatunków (lub grup gatunków) ryb w poszczególnych łowiskach. Charakterystyka morfologiczna produktów rozrodczych na różnym stopniu ich rozwoju nie jest kompletna (rosnąca wielkość jaj, obraz ułożenia naczyń krwionośnych w gonadach na różnym stopniu rozwoju produktów rozrodczych, makroskopowy obraz rozwoju jąder itp.), a badania histologii jajników i jąder na określonych etapach rozwoju dopiero się rozpoczęły. Wiele skal jest trudnych w zastosowaniu w przypadkach, gdy konieczne jest szybkie i na dużym materiale określenie stopnia dojrzałości (np. przewidzenie czasu podejścia, połowów na tarła i terminu samego tarła).

Dlatego konieczne jest opracowanie mniej lub bardziej uniwersalnej skali, z której mógłby korzystać zarówno ichtiolog w terenie, jak i menadżer biznesowy. Za taką skalę, moim zdaniem, należy na razie uznać tę, którą nakreślił prof. G.V. Nikolsky'ego (1944, 1963), który jest zbliżony do oryginalnej skali Astrachańskiego Laboratorium Ichtiologicznego.

Etap I. Osoby młode, niedojrzałe;

Etap II. Gonady są bardzo małe, jaja są prawie niewidoczne gołym okiem;

Etap III. Dojrzewając, kawior jest widoczny gołym okiem, obserwuje się niezwykle szybki wzrost masy gonad, mleko zmienia kolor z przezroczystego na bladoróżowy;

Etap IV. Dojrzałość, dojrzewają jaja i mleko (jaj i mleka nie można na tym etapie uznać za dojrzałe), gruczoły rozrodcze osiągają maksymalną masę, ale przy lekkim ucisku produkty płciowe jeszcze nie wypływają;

Etap V. Rozmnażanie, produkty rozrodcze wypływają nawet przy najmniejszym głaskaniu odwłoka, waga gonad od początku tarła do jego końca szybko maleje;

Etap VI. Podczas odstrzału, produkty rozrodcze są usuwane, otwór narządów płciowych ulega zapaleniu, gonady mają postać zapadniętych worków, zwykle u samic z pojedynczymi pozostałymi jajami i u samców z resztkami plemników.

Obserwując dojrzałość płciową ryb, zawsze należy wskazać, który ze schematów dojrzałości zastosował obserwator.

O schematach etapów dojrzałości płciowej ryb Detale podaje P. A. Dryagin w swoim artykule na temat badań terenowych rozrodu ryb (1952).

Przypomnijmy, że określenie dojrzałości ryb jest również konieczne dla taksonomii, ponieważ niektóre cechy morfologiczne ryb zmieniają się w zależności od dojrzałości jajników i jąder (wielkość szczęk u łososia, najwyższa wysokość ciała, wielkość płetw).

Współczynniki i wskaźniki dojrzałości

Masa gonad staje się jednym z obowiązkowych warunków określenia stopnia dojrzałości produktów rozrodczych, a w dzieła współczesne Coraz częściej (za sugestią G.V. Nikolsky'ego, 1939) przytacza się współczynnik dojrzałości, rozumiany jako stosunek masy gonad do masy ryby, wyrażony w procentach. Określa się całkowitą masę ryby (tj. bez usuwania gonad), następnie gonady usuwa się, waży i określa procent masy gonad w stosunku do masy całej ryby. Ten współczynnik dojrzałości oczywiście nie odzwierciedla w pełni prawdziwego stanu produktów reprodukcyjnych, ale nadal stanowi istotne uzupełnienie programów dojrzałości.

Wzór na obliczenie współczynnika dojrzałości

Gdzie Q - wymagany współczynnik zapadalności;

G 1 - waga gonad;

G- waga ryby.

Współczynnik dojrzałości pozwala monitorować postęp dojrzewania produktów rozmnożeniowych. Wadą tego współczynnika jest to, że brana jest pod uwagę waga całej ryby (wraz z przewód jelitowy i jego zawartość). Waga ta zmienia się w zależności od wypełnienia jelit; w przypadku ryb z pełnym żołądkiem wskaźnik dojrzałości będzie niedoszacowany.

Obserwując stopień dojrzałości produktów rozrodczych u ryb przy jednoczesnym tarle, P. A. Dryagin (1949) zaleca wyznaczanie współczynnika dojrzałości co najmniej raz w miesiącu u osobników w wieku dojrzałości płciowej i osobno u osobników, które nie osiągnęły dojrzałości płciowej, przy czym należy wziąć pod uwagę: oddzielnie uwzględniać: maksymalny wskaźnik dojrzałości jajników tuż przed rozpoczęciem tarła, wskaźnik bezpośrednio po tarle oraz minimalny wskaźnik przed rozpoczęciem nowego okresu dojrzewania pod koniec VI etapu.

W przypadku ryb składających tarło grupowe te same wskaźniki uwzględnia się przy miesięcznych obserwacjach, a ponadto współczynnik dojrzałości należy określić przed pierwszym, drugim i trzecim złożeniem jaj, a także bezpośrednio po zniesieniu każdej pojedynczej partii.

P. A. Dryagin przywiązuje szczególną wagę do współczynnika maksymalnej dojrzałości, charakteryzującego okres największego rozwoju gonad, który u ryb z tarłem jednorazowym następuje na krótko przed tarłem (od jednego do dwóch tygodni), u ryb z tarłem częściowym – przed złożeniem tarła. pierwsza porcja jajek. Choć wartość współczynnika jest zróżnicowana indywidualnie, to jednak może on charakteryzować charakterystyczny przebieg rozwoju produktów rozrodczych pewne gatunki ryba

Określenie maksymalnego współczynnika dojrzałości jajników ma znaczenie teoretyczne i praktyczne, np. dla ustalenia stopnia gotowości jajników do tarła, dla obliczenia wydajności jaj do celów hodowli ryb i do zamówień handlowych, dla uwzględnienia płodności i jego ocenę porównawczą u różnych gatunków.

P. A. Dryagin sugeruje również użycie współczynnika dojrzałości do obliczenia „wskaźnika dojrzałości jajników”. Przez ten termin autorka rozumie „procentowy stosunek współczynnika dojrzałości jajników, obliczonego w poszczególnych momentach ich dojrzewania i opróżniania, do współczynnika dojrzałości maksymalnej”.

Przykład. Współczynnik dojrzałości leszcza w październiku wynosi 4,8. Maksymalny współczynnik dojrzałości dla tego gatunku określa się od 10,7 do 16,3, średnio 13

Wskaźnik dojrzałości

We wrześniu wskaźnik dojrzałości leszcza wynosi 29,0, a współczynnik dojrzałości 4,0. Średnie wartości maksymalnego współczynnika dojrzałości obliczono dla stosunkowo niewielkiej liczby gatunków ryb, a ustalone średnie maksymalne współczynniki można jeszcze doprecyzować. P. A. Dryagin wyciąga następujące wstępne wnioski dotyczące maksymalnego współczynnika (w skrócie):

1. Każdy gatunek ryb ma swój własny wskaźnik dojrzałości, mniej więcej inny niż u innych gatunków.

2. Zmienność osobnicza współczynnika jest znacząca

3. Gatunki ryb z tarłem grupowym charakteryzują się zazwyczaj nieco niższym wskaźnikiem dojrzałości.

Przy określaniu wieku ryb określa się również czas osiągnięcia dojrzałości płciowej (zdolność do pierwszego rozrodu). Badania Fultona (1906), a zwłaszcza Dryagina (1934) wykazały, że długość ryb po osiągnięciu dojrzałości płciowej wynosi zwykle połowę średniej długości maksymalnej.

Przy ustalaniu wieku pierwszego tarła ryb należy pamiętać, że moment osiągnięcia dojrzałości płciowej u tego samego gatunku zależy od wielu czynników i należy go ustalić dla każdego badanego zbiornika. Obserwacje dojrzewania jajników i jąder należy prowadzić równolegle z obserwacjami meteorologicznymi i hydrologicznymi.

Ogólna zasada jest taka, że ​​wcześniej dojrzewanie mężczyźni. U łososia samce stają się zdolne do rozmnażania w ciągu życia rzecznego; u samic nie obserwuje się tego. U podeszwa(Pleuronectes platessa) Morza Barentsa, jak wykazały badania G.I. Milinsky'ego (1938), dojrzałość płciowa u samców występuje głównie w wieku 8-9 lat, a większość samic osiąga dojrzałość płciową nie wcześniej niż 11-12 lat. lat.

Pobranie i utrwalenie gonad

Przeprowadza się pobieranie i utrwalanie gonad różne sposoby, ale najbardziej odpowiedni opisuje V.A. Meyen w swoich „Instrukcjach określania płci i stopnia dojrzałości produktów rozrodczych u ryb” (1939), skąd zapożyczamy ten opis (z modyfikacjami).

Z połowy gonady - jajnika lub jądra, weź trzy kawałki o objętości około 0,5 cm 3 każdy, jeden kawałek jest odcięty od głowy gruczołu, drugi od środka i trzeci od ogona, ponieważ stopień dojrzałości gruczołu w tych obszarach może być różny. Pobrane próbki utrwala się utrwalaczem sublimacyjnym lub utrwalaczem Bouina.

Skład utrwalacza sublimatu: nasycony wodny roztwór sublimatu 100 cm 3 i lodowaty kwas octowy 5-6 cm 3 . Utrwalanie trwa 3-4 H, po czym obiekt przenosi się do 80-stopniowego alkoholu, w którym próbka jest przechowywana. Przed badaniem próbkę należy umieścić na jeden dzień w słabym roztworze jodu w alkoholu 96° (kolor mocnej herbaty), aby zapobiec krystalizacji sublimatu.

Skład płynu Bouina: 15 części nasyconego wodnego roztworu kwasu pikrynowego, 5 części 40% formaldehydu i 1 część lodowatego kwasu octowego. Utrwalenie trwa 24 H. Po utrwaleniu obiekt umieszcza się na 1-3 H w wodzie, która jest kilkakrotnie zmieniana, a następnie umieszczana w 80-stopniowym alkoholu, gdzie jest przechowywana.

Istnieją inne sposoby naprawy gonad.

Dobre rezultaty daje utrwalacz na bazie alkoholu i formaliny: na 90 części 70% alkoholu należy pobrać 10 części 40% formaliny oraz mieszaninę Zenkera (5 G sublimować, 2,5 G dwuchromian potasu, 1 G siarczan sodu, 100 cm 3 woda destylowana). Przed użyciem dodać 5 cm 3 lodowaty kwas octowy. Czas wiązania do 24 H.

Przydatnymi przewodnikami do pracy histologicznej z ikrą ryb mogą być książki G. I. Roskina - Technika mikroskopowa (1951) i B. Romeisa pod tym samym tytułem (1953).

Kończąc przegląd metod określania stopnia dojrzałości produktów rozrodu ryb, należy stwierdzić, że nie są one jeszcze doskonałe, gdyż nie dają szczegółowego obrazu przebiegu dojrzewania jajników. Należy kontynuować prace nad udoskonaleniem metodologii określania dojrzałości gonad ryb.